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Biological Activity of Extracts of the Starfish Asterias amurensis
Biological Activity of Extracts of the Starfish Asterias amurensis
Journal of Life Science. 2014. May, 24(5): 491-497
Copyright © 2014, Korean Society of Life Science
This is an Open-Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
  • Received : February 12, 2013
  • Accepted : March 18, 2014
  • Published : May 30, 2014
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About the Authors
혜진 고
Department of Biotechnology, College of Fisheries Sciences, Pukyong National University, Busan 608-737, Korea
미정 조
Department of Microbiology, College of Natural Sciences, Pukyong National University, Busan 608-737, Korea
태영 김
Department of Biotechnology, College of Fisheries Sciences, Pukyong National University, Busan 608-737, Korea
용기 홍
Department of Biotechnology, College of Fisheries Sciences, Pukyong National University, Busan 608-737, Korea
군도 김
Department of Microbiology, College of Natural Sciences, Pukyong National University, Busan 608-737, Korea
병우 이
Department of Materials System Engineering, College of Engineering, Pukyong National University, Busan 608-737, Korea
남규 박
Department of Biotechnology, College of Fisheries Sciences, Pukyong National University, Busan 608-737, Korea
ngpark@pknu.ac.kr

Abstract
Nowadays, starfish is one of problems about interruption of marine ecosystem, so many researchers are focusing on application of the starfish ( Asterias amurensis ). In this study, we investigated the contractile and relaxant activity of the smooth muscles and the antimicrobial and antioxidant activity of six different tissues (muscle, gut, liver, tube feet, gonads, and body) of A. amurensis . Frozen samples were extracted with distilled water containing 1% acetic acid. Extracts from all the tissues, except the body tissue, showed potent antimicrobial activity against Escherichia coli D31. The dorsal retractor muscles (DRM) of muscle and gut extracts showed strong contraction responses. On the other hand, contractile activity on esophagus of squid Todarodes pacificus could be detected in all tissues tested. The contractile activity of the liver extract was higher than that of the other tissues. The body, tube feet, and liver extracts showed the contractile activity on the intestine of the panther puffer fish ( Takifugu pardalis ). Relaxation response on the DRM of starfish ( A. pectinifera ) was observed in all tissues tested. Increased antioxidant activity was observed in the gut, liver, and body extracts. The results suggest that the starfish ( A. amurensis ) is a potential source of novel bioactive compounds.
Keywords
서 론
해양생물인 스펀지, 말미잘, 산호 및 어류로부터 신경성 펩타이드, 생체방어물질 및 항산화 활성을 지닌 다양한 생리활성물질이 정제되고 있다[ 6 ]. 신경성 펩타이드는 신호전달물질로서 신경계에서 신호조절 및 전달 역할을 하며, 평활근과 혈관의 수축 및 이완, 통증 등에 관련된 활성을 나타내어 생체의 항상성 유지에 중요한 역할을 담당하고 있다[ 8 , 20 ]. 대표적인 신호전달물질인 eledoisin이 낙지로부터 분리된 후[ 11 ], 척추 동물 및 무척추동물의 다양한 조직으로부터 신경성 펩타이드들(neuropeptides)이 발견되었다[ 20 ]. 최근 이들 신경전달물질들 중 어류에서 척추동물의 gonadotropin-releasing hormone (GnRH)와 유사한 GnRH-like peptide가 발견되었고[ 32 ], 해삼 ( Stichopus japonicus )의 longitudinal muscle과 body wall로부터 평활근에 수축활성을 나타내는 펩타이드가 정제되었다[ 13 , 15 ].
한편, 수산생물들은 수중에서 생활하기 때문에 육상생물보다 직접 세균에 감염 될 위험성이 더 높지만, 육상생물과 유사하게 미생물들로부터 자기 자신들을 보호하기 위한 면역체계를 지니고 있다[ 12 ]. 척추동물에는 선천면역(innate immunity)과 적응면역(adaptive immunity)이 각각 잘 발달되어 있지만 무척추동물에서는 선천면역만을 지니고 있다. 따라서 여러 가지의 선천면역 요소들 중에서 비 특이적이고 빠른 반응성을 가지는 항균활성 펩타이드에 대한 관심이 증가되고 있으며, 해양 무척추동물인 해면[ 25 ], 갑각류[ 4 , 27 ], 연체류[ 2 , 14 , 26 ], 성게[ 23 ], 갯지렁이 및 해파리[ 28 , 29 ]로부터 항균성 펩타이드가 발견되었다.
항산화제는 식품첨가물로 이용되면서 식품산업에 있어서 중요한 위치를 차지하는 물질이었으나 free radical이 노화, 암, 돌연변이를 일으키는 유인으로 지적되면서 항노화 관련 질병 치료제로 주목을 받아 왔다[ 1 , 33 ]. 항산화제로써 사용되어 온 α-tocopherol, vitamin C, tert-butylhydroxytoluene (BHT), tert-butylhydroxyanisol (BHA)는 독성이 강하고, 저활성 및 용도의 한계성으로 인해 사용을 제한 받고 있기 때문에, 이들보다 활성이 높은 동시에 안전한 항산화제를 천연물로부터 발견하고자 세균, 조류, 식물을 이용한 연구가 활발히 진행되어 오고 있다[ 17 , 19 , 31 ]. 특히 해양생물로부터 자외선에 의한 피해를 줄이기 위해서 유해한 파장 범위를 흡수하는 mycosporin- like amino acids (MAAs)가 존재함이 보고되었다[ 7 ].
따라서 불가사리 조직에도 지금까지 알려진 물질과 유사한 또는 새로운 물질들이 존재하리라 생각되어 본 연구에서는 아무르불가사리( Asterias amurensis )를 사용하여 조직별로 추출한 후 평활근 수축과 이완작용, 항균 및 항산화 활성을 살펴 보았다.
재료 및 방법
- 일반시약
Tryptic soy broth (TSB), agarose (Low EEO) 및 1,1-diphenyl- 2-picrylhydrazyl (DPPH)는 Sigma사(St. Louis, USA)에서 구입하였다.
- 조직 추출물의 조제
실험에 사용한 아무르불가사리(전장 15.0-20.0 cm)는 부산의 기장에서 채집하여 순환되는 해수수조에서 일정한 수온을 유지하여 추출직전까지 정치시켰다. 10마리의 아무르불가사리를 해부하여 몸체 껍질(body), 간(liver), 생식선(gonad), 근육(muscle), 위를 포함한 소화관(gut) 및 관족(tube feet) 조직을 분리한 뒤 1% 초산과 1:3(V/V) 으로 혼합하여 끓인 후, 블랜더로 균질화하여 4℃에서 30분 동안 15,000× g로 원심 분리하였다. 상층액은 각각 모아두고, 각 조직 침전물은 위와 동일한 과정을 2회 반복하여 첫 번째 상층액과 함께 동결 건조하였다.
- 항균 활성 측정
각각의 조직에 대한 추출물들을 사용하여 항균활성을 측정하였다. 항균활성 측정 방법으로는 서로 다른 농도를 포함한 두 층의 배지를 사용하는 ultrasensitive radial diffusion assay(URDA)법을 이용하였다[ 22 ]. URDA에 사용된 균주는 North Carolina State University의 Edward J. Noga 교수로부터 분양 받은 그람 음성균인 Escherichia coli D31을 사용하였다. 우선 배지 및 배양온도에서 18시간 동안 전배양 후 BioMerieux Vitek, Inc. Colorimeter (Product No. 52-1210, BioMerieux, Inc., USA)를 사용하여 농도를 84%T (≒ 1× 10 8 CFU/ml)가 되게 맞추었다. 그 후, 9.5 ml의 0.03% TSB, 1% Type I agarose 및 10 mM phosphate buffer (pH 6.5)를 포함하는 underlay gel에 84%T로 희석된 균 0.5 ml을 넣고 잘 섞은 후에 plate에 편평하게 부어 굳히고, 굳은 plate에 punch를 사용하여 직경 2.5 mm의 well을 뚫은 후에, 추출물 총 부피의 1/10을 도입시켰다. 모든 sample은 0.01% acetic acid (pH 4.0)에 녹여 활성을 측정하였으며, negative control로 0.01% acetic acid (pH 4.0) 5 μl를 사용하여 용매에 의한 영향이 없음을 확인하였다. 추출물이 배지에 스며들면 3시간 동안 1차 배양한 후, 그 위에 10 ml의 6% TSB, 1% Type I agarose 및 10 mM phosphate buffer (pH 6.5)를 포함하는 overlay gel을 붓고 굳힌 후에 동일한 온도에서 18시간 동안 2차 배양하였다. 다음 날, well주위의 clear zone의 유무 및 clear zone diameter (mm)를 확인하여 활성의 세기를 측정하였다.
- 별불가사리 dorsal retractor muscle (DRM)의 수축 및 이완 활성 측정
별불가사리의 eye spot을 제거한 후 배면과 복면을 분리하여 5개 팔을 따라 중앙을 가로지르는 DRM을 mess로 분리하여 10.0 mm 정도의 단편으로 만들었다. 준비된 각 단편들은 반응조 내의 지지대에 고정시키고, 위쪽은 physiography system (NECSanei, Tokyo, Japan)의 isometric transducer에 연결하여 resting tension이 1.0 g이 되도록 90분간 평형화 시켰다. 수축활성을 측정하기 위해, 별불가사리 DRM 조직의 tension이 1.0 g이 유지되면 acetylcholine (Ach) 10 -4 M 을 투여하여 활성화시켰다. 불가사리 조직 추출물들은 추출물의 총 부피의 1/10을 사용하여 인공해수에 녹인 후 반응조에 투여하여 활성을 확인하였다.
조직의 tension이 1.0 g이 유지되면 10 -4 M Ach을 투여하여 활성화 시켰고, 15분후 펩타이드를 농도별로 누적 투여하였다. 수축활성은 Ach에 대한 장관의 수축반응을 100%로 하고, 추출물에 대한 장관의 반응 정도는 Ach반응의 크기와 비교하여 나타내었다.
한편 각 조직 추출물의 이완활성을 측정하기 위해서, 조직의 tension이 1.0 g이 유지되면 10 -4 M Ach을 투여하여 활성화시켰고, 15분 후 10 -4 M Ach을 투여하여 근육을 수축시킨 후, 조직 추출물을 반응조에 투여하여 이완활성을 확인하였다. 이완활성은 10 -4 M Ach의 최대수축작용을 100%로 하여 상대적 이완 %로서 나타냈다. 모든 과정은 55 mM Mg 2+ artificial sea water (인공해수, ASW)하에서 행하였으며, 조성은 다음과 같다: NaCl 445 mM, KCl 10 mM, CaCl 2 ·2H 2 O 10 mM, MgCl 2 · 6H 2 O 55 mM, Glucose 10 mM and Tris-HCl (pH 7.8) 10 mM.
- 오징어 소화관에서의 수축활성 측정
오징어를 반으로 갈라 뇌 아래에서부터 간의 뒤로 이어지는 소화관의 중앙부분을 7.0 cm로 떼어내어 adipose 등을 제거한 후, 장관의 길이가 약 1.0 cm가 되도록 단편을 만들어 활성측정에 사용하였다. 모든 과정은 buffer하에서 행하였으며, 조성은 다음과 같다: NaCl 466 mM, MgCl 2 54 mM, CaCl 2 11 mM, KCl 10 mM, NaHCO 3 3 mM, Na-HEPES 10 mM. 준비된 식도의 아래쪽은 2 ml의 반응조에 고정시키고 위쪽은 physiography system의 isometric transducer에 연결하여 1.5 g의 장력을 준 뒤, 15분 간격으로 완충용액을 교체하면서 60분간 평형화 시켰다. 수축활성 측정은 실온에서 반응조 내에 공기를 주입시켜 주면서 안정화시킨 후 10 -5 M Carbachol (Carb)을 15분 간격으로 3회 투여하여 조직을 활성화 시켰다. 각 추출물은 총 부피의 1/10을 사용하여 반응조에 투여하였다. 시료들은 주입한 후 수축활성을 측정하여 physiography상에 기록하였다.
- 졸복 장관 평활근에 대한 수축활성 측정
졸복 장관표본을 만들기 위해 먼저 중추신경을 절단하여 복부를 절개한 후, hind gut 로부터 1.0 cm 정도 윗부분에 해당하는 장관을 약 2.0-3.0 cm 길이로 적출하였다. 모세혈관 및 adipose 등을 제거한 후, 장관의 길이가 약 1.0 cm가 되도록 단편을 만들었다. 이 과정은 buffer상에서 행하였으며, 조성은 다음과 같다: NaCl 165 mM, KCl 3 mM, MgSO 4 ·7H 2 O 1.25 mM, NaHCO 3 2 mM, CaCl 2 ·2H 2 O 1.5 mM, Glucose 10 mM (pH 7.4). 준비된 장관표본은 2 ml의 반응조에 고정시키고 위쪽은 physiography system의 isometric transducer에 연결하여 1.5 g의 장력을 준 뒤, 15분 간격으로 완충용액을 교체하면서 60분간 평형화시켰다. 수축활성 측정은 실온에서 반응조 내에 공기를 주입시켜 주면서 안정화시킨 후 10 -7 M Ach을 15분 간격으로 3회 투여하여 조직을 활성화시켰다. 각 추출물은 총 부피의 1/10을 사용하여 반응조에 투여하였다. 시료들은 주입한 후 수축활성을 측정하여 physiography상에 기록하였다. 수축활성은 10 -7 M Ach 에 의해 유도된 근육의 수축반응을 100%로 하고, 각 추출물에 대한 장관의 반응 정도는 Ach 반응의 크기와 비교하여 나타내었다.
- 항산화 활성의 측정
각 추출물은 수분을 완전히 제거하여 4 ml methanol에 용해시켰다. DPPH는 methanol에 녹여 1.5×10 -4 M이 되도록 준비하였다. 각각의 추출물들로부터 3 mg을 취하여 0.01% 초산 용액 1 ml에 녹인 후, 총 시료의 1/10씩을 사용하여 활성을 측정하였다. 1 ml DPPH solution과 추출물의 1/10이 포함된 4 ml를 UV cuvette에서 혼합하여 즉시 520 nm에서 OD 값을 측정하였고 실온에서 30분간 방치한 후 OD 값을 다시 측정하였다. 대조군으로 1 ml DPPH 용액에 4 ml methanol을 혼합한 것을 사용하였다. Radical scavenging effect (RSE)의 활성은 다음 식으로 계산하였다.
RSE (%) = [(O.D. of Standard - O.D. of Sample)/O.D. of Standard] ×100
결과 및 고찰
- 아무르불가사리 추출물들의 항균 활성
아무르불가사리의 각 조직으로부터 추출한 추출물들의 항균활성을 조사하기 위해 그람 음성균인 E. coli D31에 대해 항균활성을 측정하였다. 본 실험에 사용된 조직 추출물들의 항균활성은 서로간에 약간의 차이는 있지만, 모두 clear zone의 크기가 10.0 mm 이상으로 강한 항균활성을 나타냈다( Fig. 1 ). 아무르불가사리의 관족은 20.2 mm, 근육은 17.2 mm, 간은 14.7 mm, 생식선은 13.9 mm, 소화관은 12.8 mm의 항균활성을 나타내었다. 특히 관족 추출물은 다른 조직들에 비해 더 강한 항균활성을 나타내었다. 관족은 불가사리의 움직임을 조절하고 먹이를 잡는 역할을 담당하고 있으며, 외부 미생물에 대해 일차적으로 접촉하는 부위이다. 이러한 역할을 수행할 때 관족 끝에서 점액질이 분비된다고 알려져 있다. 또한 관족은 아가미의 보조 역할을 한다고 알려져 있다.
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Antimicrobial activity of various tissues’ extracts of the starfish A. amurensis against E. coli D31.
최근 먹장어, 넙치 등의 피부 분비물 및 굴의 아가미로부터 항균 단백질 및 펩타이드가 발견되었다[ 3 , 34 - 36 ]. 이러한 물질들은 면역반응에서 선천성 면역 반응계에서 일차적으로 자신의 생체를 방어하기 위해 분비되는 물질로 알려져 있다. 따라서 관족 추출물이 다른 조직들에 비해 높은 활성을 나타낸 이유는 아마도 이러한 선천성 면역반응에 관여하고 있는 항균성 단백질 및 펩타이드를 비롯한 다양한 종류의 물질들이 많이 존재하여 나타난 것이라 예상할 수 있다.
또한, 척추동물의 간 및 불가사리의 생식선에서 항균성 단백질 및 펩타이드가 최근 발견되었는데[ 24 , 30 ], 본 연구에서 불가사리의 조직 중 간과 생식선에서 관족 추출물의 약 70.0%에 해당하는 활성을 나타내었다. 이러한 결과는 불가사리에도 척추동물에서 발견된 물질과 유사하거나 구조가 다른 물질이 존재할 가능성을 제시한다. 흥미롭게도 근육조직 추출물에서도 관족 추출물과 유사하게 높은 항균활성이 나타나는데, 이러한 현상은 근육조직이 불가사리 내부에 존재하는 체액에 직접 노출되어 있기 때문에 체액에 존재하는 미생물로부터 자신을 보호하기 위한 반응의 결과로 예상된다. 따라서 불가사리로부터 새로운 항균성 물질이 정제된다면 인간과 다른 생물체에 피해를 주고 있는 불가사리로부터 고부가가치를 지닌 물질을 개발 및 활용할 수 있는 계기가 되리라 생각된다.
- 별불가사리 DRM, 오징어 식도 및 졸복의 장관 평활근에 대한 수축활성
불가사리 조직 추출물들의 근육 수축작용을 조사하기 위해서 별불가사리 DRM, 오징어 식도 및 졸복의 장관을 사용하였다. Table 1 은 이들 3종류의 평활근에 대한 조직 추출물의 근 수축 반응을 나타낸다. 근육 및 소화관 추출물은 별불가사리 DRM에 대해 강한 수축반응을 나타냈다( Fig. 2A ). 근육 추출물은 DRM에 대해 반응시간 동안 수축반응이 유지되었지만, 소화관 추출물에 의한 수축반응은 최대 수축 후 1분 이내에 정상적인 자율운동 상태로 되돌아 왔다. 한편 관족 및 간 추출물은 DRM에 대해 약한 수축반응을 나타냈다. 그러나 간 추출물은 거의 수축반응을 보이지 않았다.
The contractile activity of various tissues’ extracts of the starfishA. amurensison the smooth muscle of the other organisms
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*N.T.: not tested.
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The contractile activity of various tissues’ extracts of the starfish A. amurensis on the smooth muscles. A; DRM of the starfish, A. pectinifera, B; Esophagus of the squid, T. pacificus, C; Intestine of the panther puffer, T. pardalis. The extract was applied at the time indicated by arrows.
오징어의 식도에 대한 각 추출물의 근 수축활성은 Table 1 Fig. 2B 에 나타낸 바와 같이 10 -5 M Carb에 의해 유도된 근육의 수축반응을 100%로 하고, 각 추출물에 대한 장관의 반응 정도는 Carb반응의 크기와 비교하여 나타내었다. 불가사리 간(137.6%)은 매우 강한 수축반응을 나타냈으며, 근육 (75.8%), 관족(72.3%), 껍질(69.3%) 및 소화관(64.4%) 추출물들은 50.0% 이상의 높은 반응을 나타내었다. 생식선(39.6%)은 수축활성을 나타내었지만 다른 조직들에 비해 낮은 반응을 나타내었다. 간 추출물은 식도 조직에 대해 계속적인 수축반응을 나타내었으며, 소화관 및 관족 추출물은 수축반응이 진행되다가 일정시간이 지난 후에 평형상태를 유지하였다. 특히, 껍질 추출물은 오징어 식도 평활근에 대해 수축활성의 톤을 증가시켰지만, 점차적으로 수축상태가 감소되어 처음의 자율운동의 상태로 복귀되었다( Fig. 2B ). 한편, 졸복의 장관의 경우는 관족(84.1%) 및 껍질(86.4%) 추출물에서 높은 수축활성을 나타내었지만, 간(36.4%) 추출물은 비교적 낮은 수축활성을 보였다.
- 별불가사리 DRM에 대한 이완 활성
별불가사리 DRM에 대한 각 추출물의 이완활성은 Fig. 3 에 나타내었다. 간 추출물은 85.7%의 이완활성을 나타내었으며, 소화관은 68.8%, 관족은 42.9%, 근육은 41.4% 및 생식선은 14.3%의 이완활성을 보였다. 한편, 해삼으로부터 수축활성을 지닌 물질뿐만 아니라 이완활성을 나타내는 2종류의 물질이 발견되었다[ 5 , 16 ]. 그 이외에 Asterias rubens Asterias forbesi 의 radial nerve cords로부터 FMRFamide 관련 물질이 정제되었고, 이들은 불가사리 cardiac stomach에 대하여 이완활성을 나타냈다[ 9 , 10 ]. 뿐만 아니라 Asterias amurensis 의 radial nerve 로부터 S-S 결합을 지니고 있는 gonad-stimulating substance (GSS)도 분리되었다[ 16 ]. 그러나 현재까지 아무르불가사리 추출물들을 사용하여 신경성 전달물질에 대한 연구는 많이 이루어 지지 않고 있다. 따라서 본 연구의 결과는 다양한 불가사리 조직 내에 생체의 항상성에 관여하는 신경성 조절물질이 존재한다는 것을 나타내고 있기 때문에 이들 조직으로부터 아직까지 발견되지 않은 새로운 물질들을 발견하기 위한 중요한 재료로 활용할 수 있음을 제시한다.
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The relaxant activity of various tissues’ extracts of the starfish A. amurensis on the starfish A. pectinifera DRM. The extract was applied at the time indicated by arrows.
- 항산화 활성
불가사리 조직 추출물들의 항산화 활성을 알아보기 위해서 DPPH를 사용하여 RSE를 조사하였다. 항산화 활성 측정에 대한 대조구로서 vitamin C를 0.8, 4, 20, 100 및 500 μg/ml 사용하였으며, RSE는 각각 13, 19, 60, 88 및 90%를 나타냈다. Table 2 는 별불가사리 조직들의 추출물에 대한 DPPH소거능을 지표로 한 항산화 활성을 나타낸 것이다. 껍질 추출물은 100%, 간 추출물은 97.5%, 소화관 추출물은 94.1%, 근육은 35.9%의 활성을 나타내었다. 그러나, 생식선(14.0%) 및 관족(8.1%)은 다른 조직들에 비교적 약한 항산화 효과를 나타내었다. 최근 아무르불가사리( A. amurensis )로부터 피부주름 억제활성[ 21 ], 별 불가사리 추출물로부터 면역세포 활성화 효과[ 18 ] 등이 확인되었다. 따라서 새로운 항산화물질을 개발하기 위해 불가사리의 다양한 조직들이 유용성을 지니며 필수적인 연구대상이 될 수 있음을 시사해준다.
In vitroDPPH radical scavenging activity of various tissue’s extracts of the starfishA. amurensis
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In vitro DPPH radical scavenging activity of various tissue’s extracts of the starfish A. amurensis
Acknowledgements
본 연구는 환경부의 2013년 차세대 에코 이노베이션 기술 개발 사업(2013000130002)에서 지원받았습니다.
References
Ames B. N. , Shigenaga M. K. , Hagen T. M. 1993 Oxidants, antioxidants, and the degenerative diseases of aging Proc Natl Acad Sci USA 90 7915 - 7922    DOI : 10.1073/pnas.90.17.7915
Charlet M. , Chernysh S. , Philippe H. , Hetru C. , Hoffmann J. A. , Bulet P. 1996 Innate immunity. Isolation of several, cysteine-rich antimicrobial peptides from the blood of a mollusk, Mytilus edulis J Biol Chem 271 21808 - 21813    DOI : 10.1074/jbc.271.36.21808
Cole A. M. , Weis P. , Diamond G. 1997 Isolation and characterization of pleurocidin, an antimicrobial peptide in the skin secretions of winter flounder J Biol Chem 272 12008 - 12013    DOI : 10.1074/jbc.272.18.12008
Destoumieux D. , Bulet P. , Loew D. , Van D. A. , Rodriguez J. , Bachere E. 1997 Penaeidins, a new family of antimicrobial peptides isolated from the shrimp Penaeus vannamei (Decapoda) J Biol Chem 272 28398 - 28406    DOI : 10.1074/jbc.272.45.28398
Diaz-Miranda L. , Blanco R. E. , Garcia-Arraras J. E. 1995 Localization of the heptapeptide GFSKLYFamide in the sea cucumber Holothuria glaberrima (Echinodermata): a light and electron microscopic study J Comp Neurol 352 626 - 640    DOI : 10.1002/cne.903520410
Donia M. , Hamann M. T. 2003 Marine natural products and their potential applications as anti-infective agents Lancet Infect Dis 3 338 - 348    DOI : 10.1016/S1473-3099(03)00655-8
Dunlap W. C. , Yamamoto Y. 1995 Small-molecule antioxidants in marine organisms: antioxidant activity of mycosporine-glycine Comp Biochem Physiol 112 105 - 114    DOI : 10.1016/0305-0491(95)00086-N
Elliott G. R. , Barchas J. D. 1979 Neuroregulators: neurotransmitters and neuromodulators Behavioural and Brain Sciences 2 423 - 424    DOI : 10.1017/S0140525X00063445
Elphick M. R. , Melarange R. 2001 Neural control of muscle relaxation in echinoderms J Exp Biol 204 875 - 885
Elphick M. R. , Price D. A. , Lee T. D. , Thorndyke M. C. 1991 The SALMFamides: a new family of neuropeptides in the starfish Asterias rubens J Exp Biol 198 2519 - 2525
Erspamer V. , Anastasi A. 1962 Structure and pharmacological actions of eledoisin, the active endecapeptide of the posterior salivary glands of eledone Experientia 18 58 - 59    DOI : 10.1007/BF02138250
Hancock R. E. W. , Diamond G. 2000 The role of cationic antimicrobial peptides in innate host defences Trends Microbiol 8 402 - 410    DOI : 10.1016/S0966-842X(00)01823-0
Holmgren S. , Jensen J. 2001 Evolution of vertebrate neuropeptides Brain Res Bull 55 723 - 735    DOI : 10.1016/S0361-9230(01)00556-1
Iijima N. , Tanimoto N. , Emoto Y. , Morita Y. , Uematsu K. , Murakami T. , Nakai T. 2003 Purification and characterization of three isoforms of chrysophsin, a novel antimicrobial peptide in the gills of the red sea bream. Chrysophrys major Eur J Biochem 270 675 - 686    DOI : 10.1046/j.1432-1033.2003.03419.x
Iwakoshi E. , Ohtani M. , Takahashi T. , Muneoka Y. , Ikeda T. , Fujita T. , Minakata H. , Nomoto K. , Ohno M. 1995 Comparative aspects of structure and action of bioactive peptides isolated from the sea cucumber Stichopus japonicus;Peptide Chemistry Protein Research Foundation Osaka, Japan
Kanatani H. , Ikegami S. , Shirai H. , Oide H. , Tamura S. 1971 Purification of gonad-stimulating substance obtained from radial nerves of starfish Dev Growth Differ 13 151 - 164    DOI : 10.1111/j.1440-169X.1971.00151.x
Kang D. G. , Yun C. K. , Lee H. S. 2003 Screening and comparison of antioxidant activity of solvent extracts of herbal medicines used in Korea J Ethnopharmacol 87 231 - 236    DOI : 10.1016/S0378-8741(03)00142-9
Kim I. H. , Seo J. K. , Kim U. J. , Kim C. H. , Ko H. J. , Kim C. H. , Park N. K. Screening and refining of bioactive substance from Asterina pectinifera Proceeding of Spring symposium of marine society organization October 19 215 - 216
Kim W. G. , Kim J. P. , Koshino H. , Shin-Ya K. , Seto H. , Yoo I. D. 1997 Benzastatin E, F, and G: new indoline alkaloids with neronal cell protectin activity form Streptomyces nitrosporesus Tetrahedron 53 4309 - 4316    DOI : 10.1016/S0040-4020(97)00157-9
Krieger D. T. 1983 Brain peptides: what, where, and why? Science 222 975 - 985    DOI : 10.1126/science.6139875
Kwon M. C. , Kim C. H. , Kim H. S. , Hwang B. Y. , Lee H. Y. 2007 Anti-wrinkle activity of low molecular weight peptides derived from the collagen isolated from Asterias amurensis Korean J Food Sci Technol 3 625 - 629
Lehrer R. I. , Rosenman M. , Harwig S. S. L. , Jackson R. , Eisenhaur P. 1991 Ultrasensitive assay for endogenous antimicrobial polypeptides J Immunol Methods 137 167 - 173    DOI : 10.1016/0022-1759(91)90021-7
Li C. , Haug T. , Styrvold O. B. , Jørgensen T. O. , Stensvåg K. 2008 Strongylocins, novel antimicrobial peptides from the green sea urchin, Strongylocentrotus droebachiensis Dev Comp Immunol 32 1430 - 1440    DOI : 10.1016/j.dci.2008.06.013
Martinage A. , Belaiche D. , Dupressoik T. , Sautiere P. 1983 Primary structure of histone H2A from gonads of the starfish Asterias rubens Eur J Biochem 130 465 - 472    DOI : 10.1111/j.1432-1033.1983.tb07173.x
Matsunaga S. , Fusetani N. , Konosu S. 1985 Bioactive marine metabolites, IV. Isolation and the amino acid composition of discodermin A, an antimicrobial peptide, from the marine sponge Discodermia kiiensis J Nat Prod 48 236 - 241    DOI : 10.1021/np50038a006
Mitta G. , Hubert F. , Dyrynda E. A. , Boudry P. , Roch P. 2000 Mytilin B and MGD2, two antimicrobial peptides of marine mussels: gene structure and expression analysis Dev Comp Immunol 24 381 - 393    DOI : 10.1016/S0145-305X(99)00084-1
Miyata T. , Tokunaga F. , Yoneya T. , Yoshikawa K. , Iwanaga S. , Niwa M. , Takao T. , Shimonishi Y. 1989 Antimicrobial peptides, isolated from horseshoe crab hemocytes, tachyplesin II, and polyphemusins I and II: chemical structures and biological activity J Cell Biochem 106 663 - 668
Ovchinnikova T. V. , Aleshina G. M. , Balandin S. V. , Krasnosdembskaya A. D. , Markelov M. L. , Frolova E. I. , Leonova Y. F. , Tagaev A. A. , Krasnodembsky E. G. , Kokryakov V. N. 2004 Purification and primary structure of two isoforms of arenicin, a novel antimicrobial peptide from marine polychaeta Arenicola marina FEBS Lett 577 209 - 214    DOI : 10.1016/j.febslet.2004.10.012
Ovchinnikova T. V. , Balandin S. V. , Aleshina G. M. , Tagaev A. A. , Leonova Y. F. , Krasnodembsky E. D. , Men’shenin A. V. , Kokryakov V. N. 2006 Aurelin, a novel antimicrobial peptide from jellyfish Aurelia aurita with structural features of defensins and channel-blocking toxins Biochem Biophys Res Commun 348 514 - 523    DOI : 10.1016/j.bbrc.2006.07.078
Park J. H. , Kang K. C. , Baek S. B. , Lee Y. H. , Rhee K. S. 1991 Separation of antioxidant compounds from edible marine algae Korean J Food Sci Technol 23 256 - 261
Rice-Evans C. A. , Miller N. J. 1996 Antioxidant activities of flavonoids as bioactive compounds of food Biochem Soc Trans 24 790 - 795
Roch G. J. , Tello J. A. , Sherwood N. M. 2014 At the transition from invertebrates to vertebrates, a novel GnRH-like peptide emerges in amphioxus Mol Biol Evol 31 765 - 778    DOI : 10.1093/molbev/mst269
Seo J. K. , Crawford J. M. , Stone K. L. , Noga E. J. 2005 Purification of a novel arthropod defensin from the American oyster, Crassostrea virginica Biochem Biophys Res Comm 338 1998 - 2004    DOI : 10.1016/j.bbrc.2005.11.013
Seo J. K. , Lee M. J. , Go H. J. , Kim G. D. , Jeong H. D. , Nam B. H. , Park N. G. 2013 Purification and antimicrobial function of ubiquitin isolated from the gill of Pacific oyster, Crassostrea gigas Mol Immunol 53 88 - 98    DOI : 10.1016/j.molimm.2012.07.003
Subramanian S. , Ross N. W. , Mackinnon S. L. 2009 Myxinidin, a novel antimicrobial peptide from the epidermal mucus of hagfish, Myxine glutinosa L. Mar Biotechnol (NY) 11 748 - 757    DOI : 10.1007/s10126-009-9189-y
Waugh D. , Wang Y. , Hazon N. , Balment R. J. , Conlon J. M. 1993 Primary structures and biological activities of substance-P-related peptides from the brain of the dogfish, Scyliorhinus canicula Eur J Biochem 214 469 - 474    DOI : 10.1111/j.1432-1033.1993.tb17943.x