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Immature Citrus Fruit Extracts Enhance the Apoptosis Inducing Potential of Cisplatin in Human Malignant Melanoma A375 Cells via Regulation of Nitric Oxide and Inhibitor of Apoptosis Family (IAP)
Immature Citrus Fruit Extracts Enhance the Apoptosis Inducing Potential of Cisplatin in Human Malignant Melanoma A375 Cells via Regulation of Nitric Oxide and Inhibitor of Apoptosis Family (IAP)
Journal of Life Science. 2014. Apr, 24(4): 454-460
Copyright © 2014, Korean Society of Life Science
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  • Received : January 29, 2014
  • Accepted : March 29, 2014
  • Published : April 30, 2014
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지혜 김
민영 김
jeffmkim@jejunu.ac.kr

Abstract
In a previous study, we found that methanolic extracts of immature fruits of Satuma mandarin ( Citrus unshiu Marc. var. okitsu) contained relatively high amounts of phytochemicals. Here we show that a combined treatment consisting of immature fruits of Satuma mandarin and cisplatin induced strong apoptotic response in human melanoma A375 cells. We further investigated the mechanisms by which immature fruits of Satuma mandarin augment cisplatin-induced apoptosis in A375 cells. Satuma mandarin up-regulated the expression of nitric oxide synthase (NOS), elevated nitric oxide (NO ) production, and weakening the anti-apoptotic signals inhibitor of apoptosis (IAP) family, thus facilitating the process of apoptosis. These results suggest that immature fruits of Satuma mandarin in combination with cisplatin might have therapeutic value in melanoma treatment worthy of further development.
Keywords
서 론
흑색종(melanoma)은 멜라닌 세포의 악성화로 발생하며 전체 피부암의 4%를 차지하지만 그 사망률은 80%에 이르는 치명적인 피부암이다 [18 , 30 , 32] . 여타 암종과 비교하여 볼 때 흑색종은 내부 장기로 빠르게 전이되고 화학요법 및 방사선요법에 높은 저항성을 가지기 때문에 조기 발견 후 외과적 수술을 통한 절제만이 현재까지 유일한 치료법으로 인정받고 있다 [10 , 35] . 서양에서는 흑색종으로 인한 사망률이 높고 매년 발병률이 지속적으로 증가하고 있어 관련연구가 활발히 진행되고 있지만, 국내에서는 그 연구가 미미한 수준으로 이를 활성화하기 위한 다양한 방안이 마련되어야 할 것으로 보인다 [29 , 33] .
효과적인 암의 치료와 예방에 있어서 비정상적인 세포나 암세포의 apoptosis 유발은 많은 치료제의 표적이 되고 있으며, apoptosis는 크게 세포막의 death receptor에 특정 ligand가 결합함으로써 개시되는 extrinsic pathway와 mitochondrial dysfunction을 중심으로 한 intrinsic pathway로 구분할 수 있다. Intrinsic pathway는 nitric oxide (NO•)와 같은 reactive nitrogen species (RNS)의 자극에 의해 활성화될 수 있으며, 일반적으로 과량 발생된 NO•가 superoxide anion (O 2 - )과 반응하여 peroxynitrite (ONOO - )등 반응성이 큰 free radical을 생성함으로써 주변 조직에 nitrosative stress를 야기하는 것으로 알려져 있다 [13 , 14] .
암세포는 inhibitor of apoptosis (IAP)단백질이caspase-3와 caspase-9와 결합하여 그 활성을 무력화함으로 apoptosis 발생을 억제하는 것으로 보고되고 있으며, 현재까지 사람에서는 8개의 IAP family (NIAP, XIAP, cIAP-1, cIAP-2, survivin, apollen, livin, ILP-2)가 존재하는 것으로 알려져 있다. 이 중 survivin 유전자는 세포사멸뿐만 아니라 세포주기 중 G2/M기의 진행을 저해하여 IAP 중 유일하게 세포분열에 관여하고 방광암, 위암, 직장암 등에서의 발현 감소는 세포사멸과 항암제에 대한 감수성을 증가시키는 것으로 조사되어있다 [27 , 36 , 37] . 또한 X-chromosome-linked IAP (XIAP)는 일반적으로 암세포에서 높게 발현되고 여러 유발인자에 의한 발현의 감소는 전립선암, 흑색종의 증식 억제 및 apoptosis를 항진시키는 작용을 하는 것으로 보고되었다 [1 , 31 , 34] .
한편 제주감귤산업은 재배 기술의 발달로 인한 과잉 생산을 방지하고 고품질의 감귤을 생산하기 위한 열매 솎기 작업으로 매년 약 5-10만 톤에 이르는 미성숙과 처리에 애로를 겪어왔다. 게다가 2012년부터 런던협약에 따라 공해상에 부산물 투기가 불가능해짐에 따라 이에 대한 대책이 매우 시급한 실정이므로 감귤 미성숙과의 적절한 처리법이 요구되고 있다. 기존 연구 결과에 따르면 항산화, 항알레르기, 항염증, 암 증식 억제 작용 등에 유효한 효과를 보이는 다양한 생리활성 성분 함량이 감귤 성숙과에 비해 미성숙과에서 월등히 높은 것으로 나타나 [7] , 감귤 미성숙과의 활용방안에 대한 연구가 지역감귤 산업 활성화 및 농가 소득 증진에 기여할 수 있을 것으로 전망된다.
- 재료 및 방법
- 시료준비
본 연구에 사용된 흥진조생 미성숙과는 제주특별자치도 농업기술원으로부터 제공받아 24시간 동안 동결건조 후 분쇄하였다. 건조된 감귤 미성숙과에 5 g/100 ml의 농도가 되도록 100% methanol을 첨가하여 25℃, 150 rpm으로 72시간 동안 교반하며 유효성분을 추출하였다. 추출액을 1500 rpm에서 15분 간 원심분리 시키고 0.45 μm의 여과 필터로 걸러내어 부유 성분을 제거하였으며, 감압 농축을 통하여 얻어낸 고형성분(1.13 g)을 다시 동결 건조시켜 보관하였다. 실험 시에는 dimethyl sulfoxide (Amresco, Solon, Ohio, USA)를 이용하여 200 mg/ml의 농도로 stock solution을 만든 다음 적정 농도로 배지에 희석하여 사용하였다.
- 실험재료
실험에 사용된 cisplatin은 Calbiochem (Salt Lake City, UT, USA)에서 구입하였으며, 세포배양에 필요한 시약들은 Lonza (Walkersville, MD, US)에서 구입하였다. 세포생존율 측정을 위해 사용된 cell proliferation kit (MTT)는 Roche (Indianapolis, IN, USA)에서, DNA fragmentation 확인을 위한 genelute TM mammalian genomic DNA miniprep kit와 total RNA 분리를 위한 TRI reagent는 Sigma (St. Louis, MO, USA), TOP script TM one-step RT PCR kit는 Enzynomics (Daejeon, Korea)에서 각각 구입하여 사용하였다.
- 세포배양
본 실험에 사용된 인간 흑색종 A375 세포는 Massachusetts Institute of Technology (MIT)의 G. N. Wogan 박사로부터 분주 받아 10% heat-inactivated fetal bovine serum (FBS), 100 units/ml penicillin, 100 μg/ml streptomycin과 L-glutamine을 첨가한 dulbecco’s modified eagle medium (DMEM) 배지를 이용하여 37℃ 습윤한 CO 2 incubator (5% CO 2 /95% air)에서 배양하였다. 세포가 배양용기의 80% 정도 증식하였을 때 적정수의 세포를 유지하기 위하여 phosphate-buffered saline (PBS, pH 7.4)으로 세척한 후 0.25% trypsin-EDTA를 처리하여 계대 배양하였고 배양액은 3-4일마다 교환하였다.
- 세포생존율 측정
세포 생존율 측정은 Liber 등 [24] 의 방법을 변형하여 조사하였으며, 6 well plate에 세포를 2×10 6 cells/well이 되도록 분주하고 감귤 미성숙과를 농도별, 시간별로 처리한 후 세포 배양액과 0.4% trypan blue를 동량으로 넣어 hematocytometer를 이용하여 세포의 증식 정도를 광학현미경으로 관찰하였다. Cisplatin의 세포독성은 MTT assay를 이용하여 측정하였으며, 96 well plate에 5×10 4 cells/well이 되도록 세포를 분주하고 cisplatin을 농도별로 48시간 동안 처리한 후 packard EL340 microplate reader (Bio-Tek Instruments, Winooski, VT, US)로 550 nm에서의 흡광도를 측정하였다. 측정은 모두 세 번 이루어졌으며, 시험물질을 첨가하지 않은 대조군 세포수를 100%로 하여 각 시험물질의 상대적인 생존율을 구하였다.
- Cell cycle 분석
Cell cycle은 Li 등 [26] 의 방법에 따라 분석하였다. 시험 세포주(2×10 6 cells/well)에 감귤 미성숙과와 cisplatin을 48시간 동안 처리한 후 세포를 회수하여 PBS로 세척하고 70% 에탄올로 4℃에서 30분 동안 고정하였다. 고정된 세포는 1200 rpm으로 12분 동안 원심분리한 다음 상층액을 제거하고 1% FBS가 포함된 PBS로 2-3회 세척하였다. 준비된 세포를 500 μg/ml의 propidium iodide (Sigma)로 염색한 후 10 μg/μl의 RNase (Amresco)가 포함된 PBS (1% FBS)에 넣어 37℃에서 30분 간 반응시키고 BD FACS calibur TM flow cytometer (BD biosciences, San Jose, CA, US)를 이용하여 세포주기를 분석하였다.
- DNA fragmentation 분석
세포(2×10 6 cells/well)에 감귤 미성숙과와 cisplatin 처리하여 48시간 동안 배양하고, 세포를 수집하여 genelute TM mammalian genomic DNA miniprep kit로 DNA를 분리하였다. 분리한 DNA는 1.8% agarose gel에서 60-120분(50 V) 동안 전기영동하여 ethidium bromide (EtBr, Sigma)로 염색하고 UV transilluminator 하에서 DNA 단편화 현상을 관찰하였다.
- Reverse transcription-polymerase chain (RT-PCR)에 의한 mRNA 발현 분석
위와 동일한 조건으로 배양된 세포를 모은 다음 TRI reagent를 처리하여 total RNA를 분리하였으며, 분리된 RNA는 UV spectrophotometer (Ultrospec 2100 pro, GE healthcare, US)로 정량 한 후 TOP script TM one-step RT PCR kit와 각각의 primer ( Table 1 ), DEPC water를 넣고 유전자증폭기 (Genepro, Bioer Tech, Hangzhou, China)에서 증폭하였다. mRNA 발현 수준을 비교하기 위하여 각 PCR 산물을 ethidium bromide 용액이 첨가된 1.5% agarose gel에서 60-90분 (50 V) 동안 전기영동하였으며, β-actin을 internal control로 사용하였다.
Sequence of primers used for RT-PCR
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Sequence of primers used for RT-PCR
- Nitrite 생성량 측정
Nitrite 생성량은 Green 등 [11] 의 방법을 변형하여, 감귤 미성숙과 및 cisplatin을 농도별로 48시간 동안 처리한 배양용기에서 100 μl씩의 배양액을 취하여 동량의 Griess reagent (Sigma)를 첨가하고 이를 10분간 실온에 반응시켜 oxidation product인 NO 2 - 생성정도를 540 nm 파장에서 측정하였으며, 이때 NO 2 - 농도에 대한 표준곡선은 NaNO 2 를 사용하여 작성하였다.
- 통계 처리
본 실험의 결과는 평균 ± 표준편차로 표시하였으며, 통계 처리는 student’s t -test에 의해 p <0.05인 경우 유의한 것으로 판정하였다.
결과 및 고찰
- 감귤 미성숙과에 의한 A375 세포의 증식 억제
감귤 미성숙과 추출물이 A375 세포의 증식에 미치는 영향과 그 유효농도를 설정하기 위하여 trypan blue exclusion assay 를 이용하여 세포 생존율 변화를 측정하였다. 감귤 미성숙과를 농도별 (0-200 μg/ml) 로 24-72 시간 동안 처리한 결과 Fig. 1A 와 같이 농도 및 시간 의존적으로 A375 세포의 생존율이 감소하였으며, 72시간이 경과하였을 때 현저히 감소하여 약 20% 의 생존율을 나타냈다. Jayaprakasha 등 [17] 에 따르면 감귤류의 limonexic acid 및 β-sitosterol glucoside 성분이 대장암 HT-29 세포의 증식 억제 작용을 하고, Yoo 등 [38] 은 감귤류에 함유된 생리활성 물질이 전립선 암 DU145 와 LN-Cap 에 대해 암세포의 성장을 저해한다고 보고하고 있다. 또한, 감귤의 flavonoid 유도체인 noblietin, hesperetin, naringenin 등이 여러 암종을 억제하는 것으로 밝혀지고 있어 [2 , 22 , 28] , 본 연구에서도 감귤 미성숙과 추출물에 포함된 다양한 생리활성 물질 및 항산화 활성이 A375 세포의 증식 억제 작용에 영향을 미친 것으로 생각된다( Fig. 1A ).
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Growth inhibition of human malignant melanoma A375 cells after treatment with immature citrus fruit (A) and cisplatin (B). The cells were treated with variable concentrations of immature citrus fruit for 24-72 hr or cisplatin for 48 hr. Each point is the mean ± SD of three experiments.
- 감귤 미성숙과와 cisplatin 병용 처리에 의한 apoptosis 유발
Fig. 2 A에 나타난 바와 같이 감귤 미성숙과 처리 시 apoptosis가 일어난 집단에 속하는 sub-G1기의 세포 빈도는 농도-의존적으로 증가하여 200 μg/ml 에서 약 13%를 보였는데, 대장암 세포주와 백혈병 세포주에서도 감귤 추출물이 sub-G1 증가에 따른 세포사멸을 유도하는 것으로 알려져 있다 [19 , 20] .
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Effect of immature citrus fruit on cisplatin-induced apoptosis in A375 cells. (A) Cells were treated with immature citrus fruit (μg/ml) and/or cisplatin for 48 hr, stained with PI, and analyzed for cell cycle using flow cytometry. (B) Internucleosomal DNA fragmentation induced in A375 cells by immature citrus fruit and/or cisplatin. Results are expressed as mean ± SD from three separated experiments.
Cisplatin은 유방암, 전립선암, 폐암 등 여러 암의 치료제로 이용되고 있는데 [8 , 9 , 15] , 이 중 흑색종 세포주에 대한 항암효과는 SK mel-28 에서 Fas 활성화에 따른 apoptosis를 유발하거나 MeWo 세포에서 caspase 활성 및 cytochrome c 방출을 유도하여 사멸 효과를 나타내고 reactive oxygen species (ROS)를 생성하여 M14 세포를 저해하는 등 다수 보고되어있다 [4 , 6 , 12] . 본 연구에서도 cisplatin 처리 시 흑색종 A375 세포의 증식이 농도 의존적으로 증가하였으며( Fig. 1B ), 감귤 미성숙과와 병용 시 약 42%의 sub-G1 arrest가 나타나 cisplatin 단독 처리군(17%)에 비하여 뚜렷한 세포사멸 효과를 확인할 수 있었다( Fig. 2A ). 이 결과는 자궁경부암 세포주에서 cisplatin과 산삼배양근 추출물(또는 berberin)의 복합투여가 ROS 생성을 통한 항암 작용을 강화하며, cisplatin (또는 doxorubicin)과 녹차 추출물의 병용 처리가 폐암 세포주의 증식을 억제한다는 기존 연구결과와 유사한 경향을 나타내었다 [21 , 23] .
Apoptosis 유도의 직접적인 증거가 되는 DNA fragmentation 현상은 caspase가 활성화됨에 따라 180-200 bp의 길이로 DNA가 분해되는 특성으로 인해 발생하는데, Fig. 2 B와 같이 감귤 미성숙과에 의해 DNA laddering이 점차 증가하는 것을 확인할 수 있었으며 cisplatin 병용 처리 시 가장 뚜렷하게 관찰됨을 알 수 있었다. 결론적으로 감귤 미성숙과에 의해 유도된 A375 세포의 증식 억제는 apoptosis와 밀접한 연관성이 있으며, cisplatin과의 병용 처리를 통해 항암작용을 증강시킴을 알 수 있었다.
- 감귤 미성숙과와 cisplatin 병용 처리에 의한 NOS 발현 및 nitrite 생성
NO•는 3가지 nitric oxide synthase (NOS): neuronal NOS (nNOS), inducible NOS (iNOS), endothelial NOS (eNOS)에 의해 L-arginine으로부터 생성되는 물질로 발생량에 따라 apoptosis를 항진시키거나 억제하는 역할을 하는 것으로 알려져 있다 [5 , 25] . 이에 감귤 미성숙과 및 cisplatin에 의해 유도된 apoptosis와 NO•와의 관련성을 파악하기 위하여 NOS의 발현을 확인한 결과 3가지 NOS 모두 전사 수준에서 발현이 증가하였으며( Fig. 3A , Fig. 3B ), nitrite 발생량 역시 NOS 발현과 유사한 경향을 나타내며 유의적으로 증가하였다. 특히 cisplatin과 병용 처리한 경우에는 nitrite 발생량이 cisplatin 단독 처리에 비해 1.5배 증가하는 것을 확인할 수 있는데( Fig. 3C ), 이는 천연물 추출물에 의해 유도된 NO• 생성이 암의 증식 억제 및 apoptosis를 유발한다는 많은 연구결과와도 부합된다 [3 , 16] . 따라서 감귤 미성숙과 및 cisplatin의 처리에 따른 A375 세포의 apoptosis 기전에 NOS를 활성화에 의한 nitrite 생성이 관여하는 것이라 유추된다.
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Effect of immature citrus (μg/ml) and/or cisplatin on the expression of NOS isoforms (A and B) and nitrite production in A375 cells (C). The results are shown as the mean ± SD. *, p<0.05 compared with control.
- IAP family 발현에 미치는 감귤 미성숙과와 cisplatin의 영향
감귤 미성숙과 및 cisplatin에 의해 유도된 자연사멸 기전 분석을 위하여 IAP family의 발현 양상을 mRNA 수준에서 탐색한 결과, 감귤 미성숙과 단독 처리 시 큰 변화를 관찰할 수 없었지만 cisplatin 단독 처리 시 survivin 및 XIAP의 발현량이 감소하였으며 병용 처리한 경우 그 활성이 현저하게 저해되었다( Fig. 4 ). 상기 IAP family의 발현 변화로 미루어보아 감귤 미성숙과와 cisplatin 병용 처리에 의한 apoptosis 증강 작용에 survivin 및 XIAP 발현의 감소가 연관되어 있음을 알 수 있다.
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Effect of immature citrus fruit and/or cisplatin on IAPs expression. Cells were treated with indicated concentration and analyzed by RT-PCR for levels of IAPs.
이상의 결과를 종합하여 보면 감귤 미성숙과가 cisplatin에 의해 유도된 인간 흑색종 A375세포의 apoptosis를 증강시키는 효과를 지니고 있으며, NOS 발현에 따른 NO• 생성과 IAP family 중 survivin 및 XIAP 발현 감소가 동반되어 있음을 알 수 있다. Cisplatin의 항암 효과를 감귤 미성숙과가 증대시킬 수 있기 때문에 보다 효율적인 항암치료가 가능할 것으로 기대되며, 이러한 효과를 입증하기 위한 지속적인 연구가 필요할 것이라 사료된다.
Acknowledgements
이 논문은 2014년도 제주대학교 학술진흥연구비 지원사업 에 의하여 연구되었습니다.
References
Ardecky R. J. , Welsh K. , Finlay D. , Lee P. S. , Lopez M. G. , Ganji S. R. , Ravanan P. , Mace P. D. , Riedl S. J. , Vuori K. , Reed J. C. , cosford N. D. P. 2013 Design, synthesis and evaluation of inhibitor of apoptosis protein (IAP) antagonists that are highly selective for the BIR2 domain of XIAP Bioorg Med Chem Lett 23 4253 - 4257    DOI : 10.1016/j.bmcl.2013.04.096
Arul D. , Subramanian P. 2013 Naringenin (citrus flavonone) induces growth inhibition, cell cycle arrest and apoptosis in human hepatocellular carcinoma cells Pathol Oncol Res 19 763 - 770    DOI : 10.1007/s12253-013-9641-1
Aquilano K. , Filomeni G. , Di Renzo L. , Vito M. D. , Stefano C. D. , Salimei P. S. , Ciriolo M. R. , Marfe G. 2007 Reactive oxygen and nitrogen species are involved in sorbitol-induced apoptosis of human erithroleukaemia cells K562 Free Radic Res 41 452 - 460    DOI : 10.1080/10715760601134459
Biroccio A. , Benassi B. , Amodei S. , Gabellini C. , Bufalo D. D. , Zupi G. 2001 C-Myc down-regulation increase susceptibility to cisplatin through reactive oxygen species-mediated apoptosis in M14 human melanoma cells Mol Pharmacol 60 174 - 182
Brune B. , Knethen A. V. , Sandau K. B. 1999 Nitric oxide (NO) : an effector of apoptosis Cell Death Differ 6 969 - 975    DOI : 10.1038/sj.cdd.4400582
Choi S. L. , Myung P. K. 2004 Induction of apoptosis by cisplatin, heptaplatin and sunpla in human melanoma (SK-MEL-28) cell line Yakhak Hoeji 48 (2) 147 - 152
Choi S. Y. , Ko H. C. , Ko S. Y. , Hwang J. H. , Park J. G. , Kang S. H. , Han S. H. , Yun S. H. , Kim S. J. 2007 Correlation between flavonoid content and the no production inhibitory activity of peel extracts from various citrus fruits Biol Pharm Bull 30 772 - 778    DOI : 10.1248/bpb.30.772
Comella P. , Abate G. , Di Finizio G. , Daponte A. , Zarrilli D. 1990 Treatmen of resistant non-hodgkin’s lymphomas with cisplatin, etoposide, and bleomycin Cancer Chemother Pharmacol 26 306 - 309    DOI : 10.1007/BF02897236
Cown P. 2001 The Platium agents: a role in breast cancer treatment? Semin Oncol 28 28 - 37
Garbe C. , Hauschild A. , Volkenandt M. , Schadendorf D. , Stolz W. , Reinhold U. , Kortmann R. D. , Kettelhack C. , Frerich B. , Keilholz U. , Dummer R. , Sebastian G. , Tilgen W. , Schuler G. , Mackensen A. , Kaufmann R. 2007 Evidence and interdisciplinary consense-based german guidelines: diagnosis and surveillance of melanoma Melanoma Res 17 393 - 399    DOI : 10.1097/CMR.0b013e3282f05039
Green L. C. , Wagner D. A. , Glogowski J. , Skipper P. L. , Wishnok J. S. , Tannenbaum S. R. 1982 Analysis of nitrate, nitrite, and [15N] nitrate in biological fluids Anal Biochem 126 131 - 138    DOI : 10.1016/0003-2697(82)90118-X
Helmbach H. , Kern M. A. , Rossmann E. , Renz K. , Kissel C. , Gschwendt B. , Schadendorf D. 2002 Drug resistance towards etoposide and cisplatin in human melanoma cells is associated with drug-dependent apoptosis deficiency J Invest Dermatol 118 923 - 932    DOI : 10.1046/j.1523-1747.2002.01786.x
Hirst D. G. , Robson T. 2007 Nitrosative stress in cancer therapy Front Biosci 12 3406 - 3418    DOI : 10.2741/2322
Hirst D. G. , Robson T. 2010 Nitrosative stress as a mediator of apoptosis: implications for cancer therapy Curr Pharm Des 16 45 - 55    DOI : 10.2174/138161210789941838
Hogberg T. , Glimelius B. , Nygren P. 2001 A systematic overview of chemotherapy effects in ovarian cancer Acta Oncol 40 340 - 360    DOI : 10.1080/02841860151116420
Hsieh B. S. , Huang L. W. , Su S. J. , Cheng H. L. , Hu Y. C. , Hung T. C. , Chang K. L. 2011 Combined arginine and ascorbic acid treatment induces apoptosis in the hepatoma cell line HA22T/VGH and changes in redox status involving the pentose phosphate pathway and reactive oxygen and nitrogen species J Nutr Biochem 22 234 - 241    DOI : 10.1016/j.jnutbio.2010.01.009
2010 Bioactive compounds from sour orange inhibit colon cancer cell proliferation and induce cell cycle arrest J Agric Food Chem 58 180 - 186    DOI : 10.1021/jf9027816
Jemal A. , Siegel R. , Ward E. , Xu J. , Smigal C. , Thun M. J. 2006 Cancer statistics CA Cancer J Clin 56 106 - 130    DOI : 10.3322/canjclin.56.2.106
Kang S. A. , Park H. J. , Kim M. H. , Lee S. Y. , Han S. W. , Leem K. H. 2005 Citri reticulatae viride pericarpium extract induced apoptosis in SNU-C4, human colon cancer cells J Ethnopharnacol 97 231 - 235    DOI : 10.1016/j.jep.2004.11.012
Kim G. H. , Lee M. H. , Han M. H. , Park C. , Hong S. H. , Choi Y. H. 2013 Induction of apoptosis by citri pericarpium methanol extract through reactive oxygen species generation in U937 human leukemia cells J Life Sci 23 1057 - 1063    DOI : 10.5352/JLS.2013.23.8.1057
Lee B. R. , Park J. Y. , Park P. S. 2011 Effect of green tea extract on cisplatin- or doxorubicin-induced cytotoxicity in human lung cancer cell lines J Korean Soc Food Sci Nutr 40 619 - 624    DOI : 10.3746/jkfn.2011.40.5.619
Lee C. J. , Wilson L. , Jordan M. A. , Nguyen V. , Tang J. , Smiyun G. 2010 Hesperidin suppressed proliferations of both human breast cancer and androgen-dependent prostate cancer cells Phutother Res 24 15 - 19    DOI : 10.1002/ptr.2856
Lee M. Y. 2010 Cisplatin and extract of tissue cultured mountain ginseng-induced apoptosis in human cervical cancer cells Korean J Microscopy 40 133 - 138
Liber H. L. , Thilly W. G. 1982 Mutation assay at the thymidine kinase locus in diploid human lymphoblasts Mutat Res 94 467 - 485    DOI : 10.1016/0027-5107(82)90308-6
Liu L. , Stamler J. S. 1999 NO: an inhibitor of cell death Cell Death Differ 6 937 - 942    DOI : 10.1038/sj.cdd.4400578
Li Q. U. , Pang B. , Kiziltepe T. , Trudel L. J. , Engelward B. P. , Dedon P. C. , Wogan G. N. 2006 Threshold effects of nitric oxide-induced toxicity and cellular responses in wild-type and p53-null human lymphoblastoid cells Chem Res Toxicol 19 399 - 406    DOI : 10.1021/tx050283e
Lu F. , Altieri D. C. , Tanigawa N. 1998 Expression of a novel antiapoptosis gene, survivin, correlated with tumor cell apoptosis and p53 accumulation in gastric carcinomas Cancer Res 58 1808 - 1812
Luo G. , Guan X. , Zhou L. 2008 Apoptosis effect of citrus fruit extract nobiletin on lung cancer cell line A549 in vitro and in vivo Cancer Biol Ther 7 966 - 973    DOI : 10.4161/cbt.7.6.5967
Meier F. , Satyamoorthy K. , Nesbit M. , Hsu M. Y. , Schittek B. , Garbe C. , Herlyn M. 1998 Molecular events in melanoma development and progression Front Biosci 3 1005 - 1010
Megahed M. , Schon M. , Selimovic D. , Schon M. P. 2002 Peliability of diagnosis of melanoma in situ Lancet 359 1921 - 1922    DOI : 10.1016/S0140-6736(02)08741-X
Passante E. , Wurstle M. L. , Hellwig C. T. , Leverkus M. , Rehm M. 2013 Systems analysis of apoptosis protein expression allows the case-specific prediction of cell death responsiveness of melanoma cells Cell Death Differ 20 1521 - 1531    DOI : 10.1038/cdd.2013.106
Rezaul K. , Wilson L. L. , Han D. K. 2008 Direct tissue proteomics in human diseases: potential applications to melanoma research Expert Rev Proteomics 5 405 - 412    DOI : 10.1586/14789450.5.3.405
Saida T. 2001 Recent advance in melanoma research J Dermatol Sci 26 1 - 13    DOI : 10.1016/S0923-1811(01)00085-8
Saleem M. , Qadir M. I. , Perveen N. , Ahmad B. , Saleem U. , Irshad T. , Ahmad B. 2013 Inhibitors of apoptotic proteins: new targets for anticancer therapy Chem Biol Drug 82 243 - 251    DOI : 10.1111/cbdd.12176
Satyanoorthy K. , Bogenrieder T. , Herlyn M. 2001 No longer a molecular black box-new clues to apoptosis and drug resistance in melanoma Trends Mol Med 7 191 - 194    DOI : 10.1016/S1471-4914(01)02013-5
Swana H. S. , Grossman D. , Anthony J. N. , Weiss R. M. , Altieri D. C. 1999 Tumor content of the antiapoptosis molecule survivin and recurrence of bladder cancer N Engl J Med 341 452 - 453    DOI : 10.1056/NEJM199908053410614
Yamamoto T. , Manome Y. , Nakamura M. , Tanigawa N. 2002 Down-regulation of survivin expression by induction of the effector cell protease receptor-1 reduces tumor growth potential and results in an increased sensitivity to anticancer agents in human colon cancer Eur J Cancer 38 2316 - 2324    DOI : 10.1016/S0959-8049(02)00247-2
Yoo K. M. , Hwang I. K. 2004 In vitro effect of yuza (citrus junos SIEB ex TANAKA) extracts on proliferation of human prostate cancer cells and antioxidant activity Korean J Food Sci 36 339 - 344