Three triterpenoids, one sterol glycoside and a phenylpropanoid glycoside were isolated from the
n
-BuOH soulble fraction of
Paulownia coreana
twigs. On the basis of spectral data, the structure of isolated compounds were identified as pomolic acid (
1
), euscaphic acid (
2
), arjunic acid (
3
), daucosterol (
4
), and syringin (
5
), respectively. All compounds are isolated from this plant for the first time.
재료 및 방법
실험재료
−연구에 사용한 오동나무(
P. coreana
)의 어린가지는 강원대학교 구내에 식재되어 있는 것을 2013년 8월 채취한 후 저자 중의 한 명인 권용수교수가 감정하여 음건하고 세절하여 사용하였으며, 확증표본(KNUPH-T-13-01)은 강원대학교 약학대학 표본실에 보관중이다.
Chemical structures of compounds 1-5 isolated from P. koreana.
기기 및 시약
−
1
H-NMR 및
13
C-NMR spectra는 Bruker 사의 AVANCE 600을 이용하여 측정하였다. Mass spectrum 은 AB Sciex 사의 API 3200 LC/MS/MS system과 JEOL 사의 JMS-700을 이용하여 negative 또는 positive mode로 측정하였다. UV/Vis spectrophotometer는 Jasco사의 V-530을 사용하였다. Flash column chromatograhpy는 Teledyne Isco사의 CombiFlash
®
Retrieve
TM
를 이용하였고 column은 RediSep을 이용하였다. 각 분획의 추출용매 및 column chromatography용 용매는 특급시약을 사용하였다. TLC plate 는 Merck사의 precoated Kieselgel 60 F254s(layer thickness 0.25 mm, 20×20 cm, Merck Art. No. 5715), RP-18 F254s를 사용하였으며, column chromatography의 충진제는 Merck사의 Kieselgel 60(63-200 μm 또는 40-63 μm) 및 YMC gel ODS-A(150 μm)를 사용하였다. TLC spot 발색은 254 nm UV 및 20% 황산용액을 사용하였다.
추출 및 분리
−채집하여 음건한 오동나무(
P. coreana
)의 어린가지 4.2 kg을 세절하여 MeOH 12 L에 넣은 후 실온에서 1주일간 추출한 후 여과하여 여액을 감압농축기를 이용하여 농축하여 MeOH 엑스(350g)를 얻었다. 얻어진 MeOH 추출물을 증류수에 현탁시켜
n
-hexane으로 분획하여
n
-hexane 분획 14.6 g을 얻었고, 남은 물층에 chloroform을 가하고 분획하여 chloroform 가용성 분획 11.6 g을 얻었으며, 다시 남은 물층에
n
-BuOH을 가하고 분획하여
n
-BuOH 가용성 분획 51.6 g을 얻었으며, 남은 물층은 제거하였다. 얻어진 이들 분획 중 양이 가장 많은
n
-BuOH 가용성 분획으로부터 화합물을 분리하기 위하여 연구에 착수하였다.
n
-BuOH 가용성 분획(50 g)을 silica gel(Merck, 63-200 μm, 1kg) column(15×50 cm)에 걸어 CHCl
3
:MeOH:H
2
O=30:40:1을 용매로 용출시켜 7 개의 소분획(Fr. A~Fr. G)을 얻었다. 소분획 Fr. A(1.1 g)을 대상으로 silica gel (Merck, 63-200 μm,100 g) column(5×50 cm)에 걸고
n
-hexane:EtOAc=4:1을 용매로 용출시켜 5 개의 소분획(Fr.A-1~Fr.A-5)으로 나누었다. 이 중 소분획 Fr.A-3을 다시
n
-hexane:EtOAc=5:1 을 용매로 silica gel column(Merck, 40-63 μm,40g, 3×20 cm) 을 실시하여 화합물
1
(32.1 mg)을 얻었다. 소분획 Fr. B(3.8 g) 을 silica gel column(Merck, 63-200 μm,100 g, 5×50 cm)에 걸고 CHCl
3
:MeOH=19:1을 용매로 용출시켜 10 개의 소분획(Fr. B-1~Fr. B-10)으로 나누었다. 이들 소분획 중 Fr. B-7을 MeOH로 재결정을 실시하여 화합물
2
(88.4 mg)를 얻었다. 또한, Fr. B-3(0.6 g)을 대상으로
n
-hexane:EtOAc=15:1을 용매로 flash column chromatography(CombiFlash
®
Retrieve
TM
, RediSep flash column 40 g)를 실시하여 8 개의 소분획(Fr. B-3-1~Fr. B-3-8)으로 나누었고, 이들 소분획 중 Fr. B-3-5 (0.07 g)을 대상으로 MeOH:H
2
O=90:10을 용매로 flash column chromatography(CombiFlash
®
Retrieve
TM
, RediSep ODS flash column(40 g)를 실시하여 화합물
3
(21 mg)과
4
(11.6 mg)를 각각 얻었다. Fr. D(6.1 g)을 silica gel column(Merck, 63-200 μm, 500 g, 10×50 cm)에 걸고 CHCl
3
:MeOH=4:1을 용매로 용출시켜 7개의 소분획(Fr. D-1~Fr. D-7)으로 나누었다. 소분획 Fr. D-4(2.6 g)을 대상으로 MeOH:H
2
O=40:60을 용매로 flash column chromatography (CombiFlash
®
Retrieve
TM
, RediSep ODS flash column 130 g)를 실시하여 화합물
5
(840 mg)을 얻었다.
화합물 1
−White powder;
1
H-NMR (600 MHz, pyridine-
d5
) δ: 0.92 (3H, s, 25-CH
3
), 1.00 (3H, s, 23-CH
3
), 1.08 (3H, s, 26-CH
3
), 1.11 (3H, d,
J
=6.5 Hz, 30-CH
3
), 1.22 (3H, s, 24-CH
3
), 1.43 (3H, s, 29-CH
3
), 1.69 (3H, s, 27-CH
3
), 2.13 (1H, ddd,
J
=4.4, 11.6, 10.9 Hz, H-16β), 2.30 (1H, ddd,
J
=4.4, 13.5, 13.5 Hz, H-15β), 3.02 (1H, br s, H-18), 3.09 (1H, ddd,
J
=4.4,13.2,13.2 Hz, H-16α), 3.42 (1H, dd,
J
=5.0,11.1 Hz, H-3), 5.59 (1H, t-like, H-12);
13
C-NMR (150 MHz, pyridine-
d5
) δ: 181.22 (C-28), 140.41 (C-13), 28.54 (C-12), 78.71 (C-3), 73.18 (C-19), 56.36 (C-5), 55.08 (C-18), 8.77 (C-17), 48.26 (C-9), 42.85 (C-20), 42.58 (C-14), 40.85 (C-8), 39.88 (C-4), 39.51 (C-1), 38.96 (C-22), 37.86 (C-10), 34.07 (C-7), 9.77 (C-15), 29.28 (C-23), 28.56 (C-2), 27.63 (C-21), 27.42 (C-29), 26.86 (C-16), 25.18 (C-27), 24.52 (C-11), 19.44 (C-6), 17.69 (C-26), 17.28 (C-24), 17.00 (C-30), 16.09 (C-25); ESI-MS (negative mode),
m/z
471 [M-H]
-
화합물 2
−Amorphous white powder;
1
H-NMR (600 MHz, pyridine-
d5
) δ: 0.91 (3H, s, 23-CH
3
), 0.99 (3H, s, 25-CH
3
), 1.12 (3H, s, 26-CH
3
), 1.13 (3H, d,
J
=6.2 Hz, 30-CH
3
), 1.27 (3H, s, 24-CH
3
), 1.42 (3H, s, 29-CH
3
), 1.65 (3H, s, 27-CH
3
), 1.76 (1H, t,
J
=11.9 Hz, H-1α), 1.90 (1H, dd,
J
=4.2,12.0 Hz, H-1β), 2.34 (1H, ddd,
J
=4.2,13.6,13.6 Hz, H-15β), 3.05 (1H, s, H-18), 3.12 (1H, ddd,
J
=4.6, 12.9, 13.2 Hz, H-16α), 3.76 (1H, d,
J
=2.5 Hz, H-3β), 4.31 (1H, ddd,
J
=2.8,4.1,11.4 Hz, H-2β), 5.59 (1H, s, H-12);
13
C-NMR (150 MHz, pyridine-
d5
) δ: 180.67 (C-28), 139.95 (C-13), 127.99 (C-12), 79.35 (C-3), 72.68 (C-19), 66.11 (C-2), 54.59 (C-18), 48.76 (C-5), 48.28 (C-17), 47.64 (C-9), 42.88 (C-14), 42.37 (C-1), 42.18 (C-20), 40.59 (C-8), 38.80 (C-10), 38.50 (C-22), 33.52 (C-7), 29.46(C-23), 29.25(C-15), 27.07(C-29), 26.94(C-21), 26.38(C-16), 24.64 (C-27), 24.08 (C-11), 22.28 (C-24), 18.60 (C-6), 17.27 (C-26), 16.79 (C-25), 16.63 (C-30); EIMS,
m/z
(rel. int.) 488 [M]
+
(7.7), 470 [M-H
2
O]
+
(5.7), 442 [M-(COOH+H)]
+
(36.8), 424 (18.1), 409 (7.3), 370 (12.2), 264 [D/E ring (a)]
+
(12.5), 246 (31.7), 218 (32.7), 201 (37.2), 146 (100).
화합물 3
−Amorphous white powder;
1
H-NMR, (600 MHz, pyridine-
d5
) δ: 0.99 (3H, s, 26-CH
3
), 1.04 (3H, s, 25-CH
3
), 1.05 (3H, s, 24-CH
3
), 1.08 (3H, s, 30-CH
3
), 1.15 (3H, s, 29-CH
3
), 1.24 (3H, s, 23-CH
3
), 1.60 (3H, s, 27-CH
3
), 2.22 (1H, ddd,
J
=4.4,12.4,12.4 Hz, H-1α), 2.80 (1H, ddd,
J
=4.3, 14.1,12.4 Hz, H-16α), 3.35 (1H, d,
J
=9.5Hz, H-3α), 3.57 (1H, br d,
J
=4.3 Hz, H-19β), 3.59 (1H, br s, H-18β), 4.07 (1H, ddd,
J
=4.4,9.4,11.0 Hz, H-2β), 5.52 (1H, t-like, H-12);
13
C-NMR (150 MHz, pyridine-
d5
) δ: 180.91 (C-28), 144.93 (C-13), 123.15 (C-12), 83.87 (C-3), 81.23 (C-19), 68.61 (C-2), 56.05 (C-5), 48.44 (C-9), 42.21 (C-14), 40.09 (C-8), 39.88 (C-4), 38.71 (C-10), 35.73 (C-20), 33.66 (C-22), 33.33 (C-7), 29.34 (C-29), 29.15 (C-15, C-21), 28.85 (C-23), 28.39 (C-16), 24.86 (C-27), 24.81 (C-30), 24.29 (C-11), 19.03 (C-6), 17.59 (C-25, C-26), 16.80 (C-24); EIMS,
m/z
(rel. int.) 488[M]
+
(7.6), 470 (M-H
2
O)
+
(16.3), 452 (M-2H
2
O)
+
(3.2), 442 [M-(COOH-H)]
+
(8.4), 424 [M-(COOH-H+H
2
O)]
+
(7.5), 264 [D/E ring(a)]
+
(73.7), 246 (a-H
2
O)
+
(96.1), 231 (a-H
2
O-CH
3
)
+
(51.1), 219 (a-COOH)
+
(16.9), 201 [a-(COOH+H
2
O)]
+
(100)
화합물 4
−Amorphous white powder;
1
H-NMR (600 MHz, pyridine-
d5
) δ: 0.67 (3H, s, 18-CH
3
), 0.88 (3H, d,
J
=6.8 Hz, 26-CH
3
), 0.89 (3H, d,
J
=6.8 Hz, 27-CH
3
), 0.91 (3H, t,
J
=7.3 Hz, 29-CH
3
), 0.95 (3H, s, 19-CH
3
), 1.00 (3H, d,
J
=6.4 Hz, 21-CH
3
), 2.49 (1H, br t,
J
=11.2 Hz, H-4
a
), 2.74 (1H, dd,
J
=13.2, 2.1Hz, H-4
b
), 3.96 (1H, m, H-5'), 3.99 (1H, m, H-3), 4.07 (1H, t,
J
=8.0 Hz, H-2'), 4.29 (1H, t,
J
= 8.9Hz, H-3'), 4.31 (1H, t,
J
=8.8 Hz, H-4'), 4.43 (1H, dd,
J
=11.8, 5.3 Hz, H-6'
a
), 4.58 (1H, dd,
J
=11.8, 2.0 Hz, H-6'
b
), 5.07 (1H, d,
J
=7.7 Hz, H-1'), 5.36 (1H, br t,
J
=2.4 Hz, H-6);
13
C-NMR (150 MHz, pyridine-
d5
) δ: 140.94 (C-5), 121.94 (C-6), 102.60 (C-1'), 78.63 (C-5'), 78.50 (C-3), 78.13 (C-3'), 75.36 (C-2'), 71.72 (C-4'), 62.87 (C-6'), 56.86 (C-14), 56.28 (C-17), 50.37 (C-9), 46.07 (C-24), 42.51 (C-13), 39.98 (C-4), 39.36 (C-12), 37.51 (C-1), 36.95 (C-10), 36.42 (C-20), 34.24 (C-22), 32.20 (C-7), 32.09 (C-8), 30.28 (C-2), 30.04 (C-25), 29.50 (C-16), 28.57 (C-23), 26.42 (C-15), 24.54 (C-15), 23.42 (C-28), 21.31 (C-11), 20.00 (C-26), 19.45 (C-19), 19.24 (C-21), 19.04 (C-27), 12.18 (C-29), 12.01 (C-18); ESI-MS (positive mode),
m/z
599 [M+Na]
+
.
화합물 5
−Amorphous white powder;
1
H-NMR (600 MHz, DMSO-
d6
) δ: 6.73 (2H, s, H-2, H-6), 6.47 (1H, d,
J
=15.9 Hz, H-7), 6.34 (1H, dt,
J
=5.2, 15.9 Hz, H-8), 4.91 (1H, d,
J
=7.2 Hz, H-1'), 4.11 (2H, t-like,
J
=4.0 Hz, H-9), 3.77 (6H, s, OC
H
3
×2);
13
C-NMR (150 MHz, DMSO-
d6
) δ: 135.18 (C-3, C-5), 134.35 (C-4), 133.08 (C-7), 130.64 (C-1), 128.92 (C-8), 104.95 (C-2, C-6), 103.05 (C-1'), 77.67 (C-5'), 77.02 (C-3'), 74.66 (C-2'), 70.42 (C-4'), 61.93 (C-9), 61.38 (C-6'), 56.83 (O
C
H
3
×2); ESI-MS (negative mode),
m/z
371 [M-H]
-
결과 및 고찰
화합물
1
의
1
H-NMR spectrum을 보면 δ0.92, 1.00, 1.08, 1.22, 1.43 및 1.69에서 6개의 methyl기에 의한 singlet signal 을 확인할 수 있고, δ1.11에서 또 다른 하나의 methyl기가
J
=6.5 Hz의 doublet으로 나타나는 것을 확인할 수 있어 이 화합물을 ursane계 triterpenoid계열의 화합물로 추정할 수 있었으며, δ3.02에서 나타나는 H-18의 signal이 broad singlet 으로 나타나고, δ3.09에서 16번의 α proton이
J
=4.4,13.2, 13.2 Hz의 double triplet으로 나며
13
C-NMR spectrum의 δ73.18에서 C-19의 signal이 나타나 ursolic acid의 signal보다 약 43 ppm 저자장 shift하므로 이 화합물은 ursane계열의 19번 위치에 hydroxyl기가 치환되어 있는 화합물임을 알수 있었다.
12
,
13)
또한, LC-ESI MS로 측정한 분자량의 값이
m/z
471 [M-H]
+
에서 나타나는 것을 확인하였다. 이러한 결과와 문헌
14)
을 비교하여 화합물
1
은 pomolic acid로 그 구조를 동정하였다. Pomolic acid는 다양한 식물에 함유되어 있기 때문에 활성에 관한 연구도 매우 다양하게 이루어지고 있지만 cytotoxicity,
15
-
17)
foam cell 형성 억제활성
18
,
19)
과 관련된 연구의 결과들이 주로 발표되었으며, nematicidal acitiity
20)
나 anti-HIV acitivity
21)
에 관한 연구 결과도 발표되었다.
화합물
2
의
1
H-NMR spectrum에서도 δ0.91, 0.99, 1.12, 1.27, 1.42 및 1.65에서 6개의 methyl기에 의한 singlet signal 을 확인 할 수 있었을 뿐 아니라 δ1.13에서
J
=6.2 Hz의 doublet으로 나타나는 methyl기의 signal을 확인할 수 있었고, δ3.05에서 H-18의 signal이 singlet으로 나타나고 δ3.12 에서 H-16α signal이
J
=4.6, 12.9, 13.2Hz의 double doublet 으로 나타타므로 이 화합물도 화합물
1
과 동일하게 C-19 위치에 치환기가 존재하는 물질임을 알 수 있었다. 그러나 화합물
2
는 화합물
1
과 다르게 1번의 proton들이 δ1.76에서
J
=11.9 Hz의 triplet, δ1.90에서
J
=4.2, 12.0 Hz의 double triplet으로 나타나고, 2번의 proton이 δ4.31에서 2.8, 4.1, 11.4 Hz의 double doublet으로 나타났다. 또한, δ3.76에서 3번의 proton이
J
=2.5 Hz의 doublet으로 나타나는 것을 확인 할 수 있었다.
13
C-NMR spectrum의 δ22.28에서 C-24 methyl기가 나타나는데 반하여 화합물
1
의 C-1 signal은 δ17.28에서 나타나므로 5 ppm 저자장 이동되었음을 알 수 있었으며 이는 화합물
2
의 3번에 치환된 hydroxyl기는 α(axial)로 결합되어 있음을 알 수 있었다. C-2의 signal이 δ66.11에서 나타나 화합물
1
의 2번 탄소의 signal보다 37.55 ppm 저자장 이동된 것으로부터 화합물
2
는 2번 탄소에도 hydroxyl기가 치환되어 있음을 알 수 있었으며 3번 proton 이
1
H-NMR specturm의 δ3.76에서
J
=2.5 Hz의 비교적 적은 값의 doublet으로 나타나므로 2번 탄소에 치환된 hydroxyl 기도 α(axial)로 결합되어 있음을 알 수 있었다.
12
,
13)
EI-MS 로 측정한 MS spectrum에서 분자량이
m/z
488에서 나타나화합물
1
의 분자량보다 한 개의 hydroxyl기만큼 많음을 알 수 있었으므로 위의 사실과 일치함을 알 수 있었다. 이들 결과와 문헌
22)
을 비교하여 화합물
2
는 euscaphic acid로 동정하였다. 이 화합물도 pomolic acid와 마찬가지로 다양한 식물에 함유되어 있어 항염증활성,
23
,
24)
동맥경화억제활성,
25)
항암활성 증강작용
26)
등의 활성이 보고되었다. 화합물
3
은
1
H-NMR spectrum의 δ0.99, 1.04, 1.05, 1.08, 1.15, 1.24 및 1.60에서 angular methyl기에 의한 singlet들이 나타나므로 화합물
1
과
2
와는 다른 oleanane계열의 triterpenoid 화합물임을 알 수 있었다. 또한, EI-MS로 측정한 분자량이
m/z
488[M]
+
에서 나타나 화합물
2
와 동일한 분자량을 가지고 있음을 알 수 있었다.
1
H-NMR spectrum의 δ3.35에서 H-3가
J
=9.5Hz의 doublet으로 나타나고, δ3.57에서 H-19가
J
=4.3 Hz의 doublet으로 나타나며, δ4.07에서 H-2가
J
=4.4,11.0, 9.4Hz의 double triplet으로 나타났다. 또한,
13
C-NMR spectrum의 δ83.87에서 C-3, δ81.23에서 C-19 그리고 δ68.61 에서 C-2의 signal들이 나타나므로 이 화합물도 2, 3 및 19번 위치에 OH가 결합되어 있음을 알 수 있었다.
13
C-NMR spectrum의 δ16.80에서 24번의 methyl기의 signal이 나타나는 것으로부터 3번의 OH는 β로 결합하고 있음을 알 수 있었으며 3번의 proton이
1
H-NMR의 δ3.35에서
J
=9.5 Hz의 doublet으로 나타나 비교적 큰 값의 coupling constant를 가지므로 2번 탄소의 OH는 α로 결합하고 있음을 알 수 있었다. EI-MS spectrum의 분자량이
m/z
488에서 나타나고 retro Diels-Alder반응에 의하여 생성된 fragmentation ion 중 D/E ring에 의한 fragmentation ion이
m/z
264에서 나타나난 것으로부터도 위의 사실을 확인할 수 있었다. 또한, HSQC, HMBC 및 NOESY 등의 분석을 통하여 구조를 확인하였다. 이러한 사실과 문헌
14
,
27)
을 비교하여 화합물
3
은 arjunic acid로 동정하였다. Arjunic acid의 활성으로는 항염증,
28
,
29)
세포독성,
29
,
30)
및 항산화
31)
활성이 보고되었다. 화합물
4
는
1
H- 및
13
C-NMR spectrum과 MS spectrum의 data를 문헌
32)
과 비교하여 daucosterol로 동정하였으며 이 화합물은 박 등이 참오동나무(
Paulownia tomentosa
)의 줄기로부터 분리, 보고한 바 있다.
33)
화합물
5
의
1
H-NMR spectrum을 보면 δ6.73에서 proton 2개에 해당하는 singlet이 나타나고, δ6.47 에서 나타나는
J
=15.9Hz의 doublet, δ6.34에서 나타나는
J
=15.9, 5.2의 doublet-triplet 및 δ4.11에서 나타나는
J
=4.0 Hz의 triplet 모양의 signal과 더불어 δ3.77에서 두 개의 methoxyl기에 의한 signal이 나타났다. 이 결과로부터 이 화합물은 3,4,5번에 치환기가 존재하는 trisubstituted phenylpropanoid계열의 화합물임을 알 수 있었으며 2번과 6번의 치환기는 methoxyl기임을 알 수 있었다. 또한,
1
H-NMR spectrum의 δ4.91에서 나타나는
J
=7.2 Hz의 doublet으로부터 이 화합물에는 한 개의 당이 β로 결합하고 있음을 알 수 있었으며, 결합된 당의 종류는 가수분해 후 TLC분석을 통하여 D-glucose임을 알 수 있었다. 당의 결합위치는 4번 또는 9번에 결합되어 있으므로 이들 두 탄소의
13
C-NMR shift 를 비교한 결과 C-4는 δ134.35에서 나타나고, C-9는 δ61.93 에서 나타났다. 이 chemical shift를 문헌
34)
과 비교한 결과 당은 4번 위치에 결합되어 있음을 알 수 있었다. 위의 사실을 문헌
35)
과 비교하여 화합물
5
는 syringin으로 동정할 수 있었으며, 이 화합물은 참오동나무(
P. tomentosa
)의 수피로 부터 분리, 보고된바 있다.
36)
Syringin의 활성으로는 세포독성,
37)
수면유도,
38)
신경보호
39)
및 항염증
40)
등이 보고되어 졌다.
결 론
오동나무 가지의 함유 성분을 밝히고 이들의 구조를 동정하여 자원화 가능성을 알아보기 위하여 연구에 착수하고 MeOH 추출물의
n
-BuOH 가용성 분획으로부터 5종의 화합물을 분리하였으며, 각종 기기분석을 통하여 분리된 화합물의 구조를 동정한 결과 분리된 화합물의 구조는 각각 pomolic acid (
1
), euscaphic acid (
2
), arjunic acid (
3
), daucostero (
4
) 및 syringin (
5
)임을 알 수 있었으며 이들 성분은 이 식물로부터는 처음으로 분리된 것이었다. 또한, 본 연구를 통해 분리된 화합물들이 다양한 활성을 가지므로 오동나무 가지는 약용 자원화를 위한 자원으로서 사용할 가치가 있는 것으로 생각된다.
Acknowledgements
이 연구는 강원대학교 약학대학 전공심화실습 프로그램에 의하여 이루어 졌음.
이 우철
(1996)
원색 한국기준식물도감
아카데미서적
서울
319 -
배 기환
(2000)
한국의 약용식물
교학사
서울
460 -
Oh J, S.
,
Moon H. I.
,
Zee O. P.
(2000)
Cytotoxic compounds from the flowers ofPaulownia coreana
Kor. J. Pharmacogn.
31
449 -
454
Si Chuanling
,
권 동주
,
김 진규
,
함 연호
,
배 영수
오동나무 (Paulownia coreanaUyeki) 잎의 추출성분
한국 목재공학회 학술발표논문집
(2004)
416 -
418
Kim J. K.
,
Si C.
,
Bae Y. S.
(2008)
Phenylpropanoid glycosides from the leaves ofPaulownia coreana
Nat. Prod. Res.
22
241 -
245
DOI : 10.1080/14786410701590467
Si Chuanling
,
권 동주
,
김 진규
,
함 연호
,
배 영수
오동나무 (Paulownia coreana Uyeki) 수피의 추출성분
한국목재공학회 학술발표 논문집
(2005)
548 -
551
Ki J. K.
,
Si C.
,
Bae Y. S.
(2007)
Epimeric phenylpropanoid glycosides from inner bark ofPaulownia coreanaUyeki
Holzforschung
61
161 -
164
Si Chuanling
,
권 동주
,
김 진규
,
함 연호
,
배 영수
오동나무 (Paulownia coreanaUyeki) 열매의 추출성분
한국목재공학회 학술발표 논문집
(2005)
543 -
547
Si C.
,
Kim J. K.
,
Kwon D. J.
,
Kwon Y. S.
(2006)
Phenolic compounds from the fruits ofPaulownia coreanaUyeki
Mokche Konghak
34
79 -
85
Kim J. K.
,
Lee Y. S.
,
Kim S. H.
,
Bae Y. S.
,
Lim S. S.
(2011)
Inhibition of aldose reductase by phenylethanoid glycoside isolated from the seeds ofPaulownia coreana
Biol. Pharm. Bull.
34
160 -
163
DOI : 10.1248/bpb.34.160
Chung I. M.
,
Kim E. H.
,
Jeon H. S.
,
Moon H. I.
(2010)
Protective effects of isoatriplicolide tiglate fromPaulownia coreanaagainst glutamate-induced neurotoxicity in primary cultured rat cortical cells
Nat. Prod. Commun.
5
851 -
852
Kan S. S.
(1987)
13C-NMR spectroscopy of amyrins
Kor. J. Pharmacogn.
18
151 -
167
강 삼식
,
손 건호
(2000)
천연물성분 구조결정법
서울대학교 출판부
서울
203 -
265
Yean M. H.
,
Kim J. S.
,
Hyun Y. J.
,
Hyun J. W.
,
Bae K.
,
Kang S. S.
(2012)
Terpenoids and phenolics fromGeum japonicum
Kor. J. Pharmacogn.
43
107 -
121
Kuete V.
,
Sandjo L. S.
,
Seukep J. A.
,
Zeino M.
,
Mabaveng A. T.
,
Ngadjui B.
,
Efferth T.
(2015)
Cytotoxic compounds from the fruits ofUapaca togoensistowards multifactorial drug-registnat cancer cells
Planta Med.
81
32 -
38
Youn S. H.
,
Lee J. S.
,
Lee M. S.
,
Cha E. Y.
,
Thuong P. T.
,
Chang E. S.
(2012)
Anticnacer properties of pomolic acid-induced AMP-activated protein kinase activation in MCF7 human breast cancer cells.
Biol. Pharm. Bull.
35
105 -
110
DOI : 10.1248/bpb.35.105
Yoo K. H.
,
Park J. H.
,
Lee D. K.
,
Fu Y. Y.
,
Baek N. I.
,
Chung I. S.
(2013)
Pomolic acid induces apoptosis in SK-O-3 human ovarian adenocarcinoma cells through the mitochondrial-medicated intrinsic and death receptor-induced extrinsic pathways.
Oncol. Lett.
5
386 -
390
Ono M.
,
Yasuda S.
,
Komatsu H.
,
Fujiwara Y.
,
Takeya M.
,
Nohara T.
(2014)
Triterpenoids from the fruits and leaves of blackberry (Rubus alleghenisis) and their inhibitory activities on foam formation in human monocyte-derived macrophage.
Nat. Prod. Res.
28
2347 -
2350
DOI : 10.1080/14786419.2014.939087
Fujiwara Y.
,
Hayashida A.
,
Tsurushia K.
,
Nagai R.
,
Yoshitomi M.
,
Daiguji N.
,
Sakashita N.
,
Takeya M.
,
Tsukamoto S.
,
Ikeda T.
(2011)
Triterpenoids isolated fromZizyphus jujubainhibit foam cell formation in macrophages.
J. Agric. Food Chem.
59
4544 -
4522
DOI : 10.1021/jf200193r
Begum S.
,
Zehra S. Q.
,
Siddiqui B. S.
,
Fayaz S.
,
Ramzan M.
(2008)
Pentacyclic triterpenids from the aerial parts ofLantana camaraand their nematicidal activity.
Chem. Biodivers.
5
1856 -
1866
DOI : 10.1002/cbdv.200890173
Kashiwada Y.
,
Wang H. K.
,
Nagao T.
,
Kitanak S.
,
Yasuda I.
,
Fujioka T.
,
Yamagishi T.
,
Cosentino L. M.
,
Kozuka M.
,
Okabe H.
,
Ikeshiro Y.
,
Hu C. Q.
,
Yeh E.
,
Lee K. H.
(1998)
Anti-AIDS agents. 30. Anti-HIV activity of olanolic acid, pomolic acid, and structurally related triterpenoids.
J. Nat. Prod.
61
1090 -
1095
DOI : 10.1021/np9800710
Kim J. S.
,
Yean M. H
,
Lee S. Y.
,
Lee J. H.
,
Kang S. S.
(2009)
Phytochemical studies on Lonicera Caulis (1) - sterols and triterpenoids
Kor. J. Pharmacogn.
40
319 -
325
Kim I. T.
,
Ryu S.
,
Shin J. S.
,
Choi J. H.
,
Park H. J.
,
Lee K. T.
(2012)
Euscaphic acid isolated from roots ofRosa rugosainhibits LPS-induced inflammatory responses via TLR4-mediated NF-κB inactivation in RAW 264.7 macrophages.
J. Cell Biochem.
113
1936 -
1946
DOI : 10.1002/jcb.24062
Aladedunye F. S.
,
Okorie D. A.
,
Ighodaro O. M.
(2008)
Anti-inflammatory and antioxidant activities and constituents ofPlatostoma africanumP. Beauv.
Nat. Prod. Res.
22
1067 -
1073
DOI : 10.1080/14786410802264004
Zhang Q.
,
Chang Z.
,
Wang Q.
(2006)
Ursane triterpenoids inhibit atherosclerosis and xanthoma in LDL receptor knockout mice.
Cardiovasc. Drugs Ther.
20
349 -
357
DOI : 10.1007/s10557-006-0509-4
Banno T.
,
Akihisa T.
,
Tokuda H.
,
Yasukawa K.
,
Taguchi Y.
,
Akazawa H.
,
Ukiya M.
,
Kimura Y.
,
Suzuki T.
,
Nishino H.
(2005)
Anti-inflammatory and antitumor-promoting effects of the triterpene acids from the leaves ofEriobotrya japonica.
Biol. Pharm. Bull.
28
1995 -
1999
DOI : 10.1248/bpb.28.1995
Saxena M.
,
Faridi U.
,
Mishra R.
,
Gupta M. M.
,
Darokar M. P.
,
Srivastava S. K.
,
Singh D.
,
Luqman S.
,
Khanuja S. P.
(2007)
Cytotoxic agents fromTerminalia arjuna
Planta Med.
73
1486 -
1490
DOI : 10.1055/s-2007-990258
Yang M. H.
,
Ali Z.
,
Khan I. A.
,
Khan S. I.
(2014)
Antiinflammatory activity of constituents isolated fromTerminalia chebula.
Nat. Prod. Commun.
9
965 -
968
Eldeen I. M.
,
Van Heerden F. R.
,
Van Staden J.
(2008)
Isolation and biological activities of termilignan B and arjunic acid fromTerminalia sericearoots.
Planta Med.
74
411 -
413
DOI : 10.1055/s-2008-1034357
Zhang L. J.
,
Cheng J. J.
,
Liao C. C.
,
Cheng H. L.
,
Huang H. T.
,
Kuo L. M.
,
Kuo Y. H.
(2012)
Triterpene acids fromEuscaphis japonicaand assessment of their cytotoxic and anti-NO activities.
Planta Med.
78
1584 -
1590
DOI : 10.1055/s-0032-1315040
Sun F. Y.
,
Chen X. P.
,
Wang J. H.
,
Qin H. L.
,
Yang S. R.
,
Du G. H.
(2008)
Arjunic acid, a strong free radical scavenger fromTerminalia arjuna.
Am. J. Chin. Med.
36
197 -
207
DOI : 10.1142/S0192415X08005709
Lee D. Y.
,
Lee S. J.
,
Kwak H. Y.
,
Jung L.
,
Heo J.
,
Hong S.
,
Kim G. W.
,
Baek N. I.
(2009)
Sterols isolated from Nuruk (Rhizopus oryzaeKSD-815) inhibit the migration of cancer cells.
J. Microbiol. Biotechnol.
19
1328 -
1332
Park Y. M.
,
Jang S. K.
,
Kim Y. S.
,
Kim B. K.
(1991)
The constituents ofPaulownia tomentosaStem.
Yakhak Hoeji
35
301 -
307
Greca M. D.
,
Ferrara M.
,
Fiorentino A.
,
Monaco P.
,
Previtera L.
(1998)
Antialgal compounds fromZantedeschia aethiopica.
Phytochemistry.
49
1299 -
1304
DOI : 10.1016/S0031-9422(98)00092-2
Park H. J.
(1996)
A New aporphine-type alkaloid from the leaves ofMagnolia sieboldiiK. Koch.
Kor. J. Pharmacogn.
27
123 -
128
Lall N.
,
Kishore N.
,
Binneman B.
,
Twilley D.
,
van de Benter M.
,
Plessis-Stoman D. D.
,
Boukes G.
,
Hussein A.
(2015)
Cytotoxicity of syringin and 4-methoxycinnamyl alcohol isolated fromFoeniculum vulgareon selected human cell lines.
Nat. Prod. Res.
15
1 -
5
DOI : 10.1080/14786419.2014.999058
Cui Y.
,
Zhang Y.
,
Liu G.
(2015)
Syringin may exert sleep-potentiating effects through the NOS/NO pathway.
Fundam. Clin. Pharmacol.
29
178 -
184
DOI : 10.1111/fcp.12095
Yang E. J.
,
Kim S. J.
,
Ku H. Y.
,
Lee D. S.
,
Lee J. W.
,
Seong Y. H.
,
Song K. S.
(2010)
Syringin from stem bark ofFraxinus rhynchophyllaprotects abeta(25-35)-induced toxicity in neuronal cells.
Arch. Pharm. Res.
33
531 -
538
DOI : 10.1007/s12272-010-0406-z
Choi J.
,
Shin K. M.
,
Park H. J.
,
Jung H. J.
,
Kim H. J.
,
Lee Y. S.
,
Rew J. H.
,
Lee K. T.
(2004)
Anti-inflammatory and antinociceptive effects of synapyl alcohol and its glucoside syringin.
Planta Med.
70
1027 -
1032
DOI : 10.1055/s-2004-832642