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Anti-inflammatory Effects of <TEX>$1{\beta}$</TEX>,<TEX>$6{\alpha}$</TEX>-Dihydroxyeudesm-4(15)-ene Isolated from Myrrh on LPS-induced Neuroinflammation in BV2 cells
Anti-inflammatory Effects of $1{\beta}$,$6{\alpha}$-Dihydroxyeudesm-4(15)-ene Isolated from Myrrh on LPS-induced Neuroinflammation in BV2 cells
Korean Journal of Pharmacognosy. 2015. Mar, 46(1): 12-16
Copyright © 2015, The Korean Society of Pharmacognosy
  • Received : February 24, 2015
  • Accepted : March 17, 2015
  • Published : March 31, 2015
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동철 김
치수 윤
원민 고
동성 이
대성 김
형권 조
정원 서
성연 김
현철 오
yckim@wku.ac.kr
윤철 김
yckim@wku.ac.kr

Abstract
Myrrh is a resinous substance obtained from Commiphora trees, which has long been used as an antiseptic agent. A sesquiterpene, 1 β ‚ 6 α -dihydroxyeudesm-4(15)-ene (DE), was isolated from the hot water extract of Myrrh. In the present study, we found that DE attenuates the lipopolysaccharide (LPS)-induced inflammation in BV2 microglial cells. DE significantly inhibited LPS-induced production of pro-inflammatory mediators such as nitric oxide (NO) and prostaglandin E 2 (PGE 2 ) in BV2 microglia in a concentration-dependent manner without cytotoxic effect. Furthermore, DE dose-dependently suppressed the protein expression of inducible nitric oxide synthase (iNOS) and cyclooxygenase-2 (COX-2). These results suggest that DE may be a good candidate to regulate LPS-induced inflammatory response.
Keywords
재료 및 방법
실험재료 −본 실험에 사용된 몰약은 2014년 3월 전북 진안군 원광허브에서 구입하였으며, (유)한풍제약 조형권 박사가 동정하였다. 확증표본(HP-2014-12)은 (유)한풍제약 표본실에 보관되어 있다. 분쇄한 몰약 500 g을 20배의 증류수에 넣고 2시간 동안 환류추출하였다. 추출액을 여과하고 여과 후 60℃이하에서 감압농축하여 물 추출물 360 g을 얻었다(수득률 72.0%).
시약 및 기기 − DMEM 배지, trypsin-ethylenediaminetetraacetic acid(EDTA), fetal bovine serum(FBS)는 Invitrogen(Carlsbad, CA, USA)에서 구입하였다. 3'-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide(MTT)는 Sigma사에서 구입하였다. 96-well tissue culture plates와 기타 tissue culture dishes는 Nunc사 제품을 이용하였다. 흡광도는 BioRad사의 Microplate Reader를 이용하여 측정하였다. NMR 스펙트럼은 JEOL JNM ECP-400 spectrometer(400 MHz for 1 H and 100 MHz for 13 C)기기로 CDCl 3 용매를 이용하여 측정하였다.
몰약 추출물로부터 DE의 분리 및 구조 동정 −몰약 물추출물 60 g을 MeOH로 현탁시킨 후 MeOH에 녹는 부분을 EtOAc, BuOH을 이용하여 순차적으로 분획한 후 각 분획들을 감압농축하여, MeOH 불용부(2.65 g), EtOAc 분획물(23.3 g), BuOH 분획물(18.7 g) 및 H 2 O 분획물(22.4 g)을 얻었다. EtOAc 분획물 3.5 g을 Sephadex-LH20 column chromatography를 이용하여 n -hexane:acetone(3:1)의 용매조건으로 용출하고 TLC 양상이 비슷한 것들을 합하여 3개의 소분획물(Fr. 1-3)을 얻었다. Fr. 2(1.9 g)는 MeOH:H 2 O(1:1)의 용매를 이용하여 역상(RP-C 18 ) column chromatography를 실시하여 9개의 소분획물(Fr. 21-29)을 얻었다. Fr. 25(520mg)는 n -hexane:acetone(4:1)의 용출용매를 사용하여 silica gel column chromatography를 실시하여 1 β ,6 α -dihydroxyeudesm-4(15)-ene (22 mg)을 얻었다.
1 β , 6 α -Dihydroxyeudesm-4(15)-ene: 1 H NMR (400 MHz, CDCl 3 ) δ: 5.00 (1H, br s, 15-Ha) , 4.72 (1H, br s, 15-Hb), 3.70 (1H t, J =9.9, 9.8 Hz, 6-H), 3.40 ( 1H, dd, J =11.7, 4.7 Hz, 1-H), 2.31 (1H, ddd, J =13.2, 4.8, 2.2 Hz, 3-Ha), 2.22 (1H, ddd, J =13.9, 7.0, 2.6 Hz, 11-H), 2.05 (1H, td, J =26.9, 7.6, 5.5, 5.1 Hz, 3-Hb), 1.91(1H, m, 8-Ha), 1.73 (1H, d, J =9.9 Hz, 5-H), 1.53-1.54 (2H, m, 2, 8-H), 1.28 (1H, m, 7-H), 1.16-1.23 (2H, m, 9-H 2 ), 0.95 (3H, d, J =7.0 Hz, 13-CH 3 ), 0.85 (3H, d, J =7.0 Hz, 12-CH 3 ), 0.68 (3H, s, 14-CH 3 ); 13 C NMR (100 MHz, CDCl 3 ) δ: 146.3 (4-C), 107.9 (15-CH 2 ), 79.0 (1-CH), 67.0 (6-CH), 55.9 (5-CH), 49.3 (7-CH), 41.8 (10-C), 36.3 (9-CH 2 ), 35.2 (3-CH 2 ), 31.9 (2-CH 2 ), 26 (11-CH), 21.2 (13-CH 3 ), 18.2 (8-CH 2 ), 16.2 (12-CH 3 ), 11.7 (14-CH 3 ).
세포배양 − BV2 미세아교세포(5×10 5 cells/well)를 10% heat-inactivated FBS, penicillin G(100 IU/ml), streptomycin(100 μg/ml), L-glutamine(2 mM)을 함유한 DMEM배지에 분주하고 5% CO 2 배양기내에서 37℃의 온도로 배양하였다.
세포독성 −본 실험에서 BV2 미세아교세포에 대한 세포독성 및 실험 시 처리농도를 결정하고, DE의 세포독성을 측정하기 위하여 MTT assay를 사용하였다. 간단히 기술하면 먼저 96 well plate에 세포를 1×10 4 cells/well로 동일하게 분주하고 배양하였다. 24시간 동안 배양한 후 기존의 배지를 제거하고 새로운 배지를 넣어준 다음 DMSO에 녹인 시료를 다양한 농도(20, 40, 80, 160 μM)로 DMEM배지에 희석하여 첨가하였다. DMSO의 처리농도는 배지 대비 0.1% 이하가 되도록 하였다. 이를 다시 24시간 배양한 다음에 배지를 제거하고 MTT 시약(5 mg/ml)을 넣고, 4시간 동안 방치한 후 상등액을 제거하였다. 각 well에 DMSO 150 μl를 첨가하여 생성된 formazan을 orbital shaker를 이용하여 녹이고, 30분 후 595 nm에서 흡광도를 측정하였다. 실험은 3회 반복 실시하여 평균값을 구하였으며, 대조군의 흡광도값을 기준으로 세포생존율을 비교하였다.
Western Blot Analysis − BV2 세포를 60 mm dish에 3×10 5 cells/well 밀도로 24시간 배양한 후 시료를 농도별로 처리하였다. BV2 세포에 RIPA buffer를 첨가한 다음, 4℃, 14,000×g에서 25분 동안 원심분리하고 상등액을 튜브에 옮겼다. 단백질정량은 BSA 단백질 실험키트를 이용하였고, 각각의 시료를 7.5% SDS-polyacrylamide gel에서 영동하고 nitrocellulose membrane(NC membrane)으로 전사하였다. 전사된 NC membrane을 5% 무지방유가 포함된 신선한 blocking buffer(0.1% Tween 20 in Tris-buffered saline)에서 blocking한 후 iNOS, COX-2 antibody를 1:1000으로 희석하여 넣고 1시간30분 동안 반응시켰다. 다시 2차 antiboby(Anti-mouse IgG)를 1:1000으로 희석하여 넣고 1시간 동안 반응시킨 다음, ECL용액을 1:1 비율로 잘 섞어서 NC membrane위에 가하여 발광시킨 다음 암실에서 X선 필름에 감광한 후 현상하였다. 같은 방법으로 actin antibody를 이용하여 actin을 측정하였다.
Nitrite Assay −배양된 세포를 5×10 5 cells/well 수준으로 96 well plate에 100 μl씩 접종한 다음 24시간 동안 배양하였다. 24시간 동안 배양을 한 다음 medium을 제거하고 DMEM으로 희석된 각 농도별 시료를 넣은 다음 이어서 LPS(1 μg/ml)를 처리하였다. 24시간 동안 배양을 마친 다음세포에서 배양액으로 분비된 NO의 양을 Griess시약[0.1%(w/v) N -(1-naphathyl)-ethylenediamine and 1%(w/v) sulfanilamide in 5%(v/v) phosphoric acid]을 사용하여 반응시켰다. 반응이 완료된 후 ELISA micro plate reader(Bio Rad Laboratories Inc., CA, USA)를 사용하여 540 nm에서 측정하였다.
EIA에 의한 PGE2 측정 − PGE 2 의 측정은 항체(lyophilized prostaglandin E 2 conjugate to horseradish peroxidase)를 사용하여 prostaglandin E 2 enzyme immunoassay system (EIA, Amersham Pharmacia Biotech, Inc., Piscataway, NJ, USA)을 이용하였다.
통계처리 −본 실험의 통계처리는 GraphPad Prism, version 3.03(GraphPad Software Inc., San Diego, CA, USA)을 사용하였다. 각 실험군간의 결과는 평균치와 표준오차로 나타내었으며, 각 실험군간의 결과는 ANOVA test를 사용하여 분석하고 유의적인 차이가 있는 항목에 대해서만 검정하였다. 실험군간의 차이는 95% 수준(p<0.05)에서 유의성 있는 것으로 하였다.
결과 및 고찰
염증반응은 다양한 내인적 또는 병원균 등의 외인적 위험요소에 대한 중요한 생체방어 역할을 수행한다. 미세아교세포는 뇌와 척수에 존재하는 면역 감시적 역할을 하는 대식 세포로서 정상적인 상태에서는 뇌의 항상성을 유지시키는 숙주 방어기능을 수행한다고 알려져 있다. 15) 그러나, 물리적 손상, 감염 및 염증 등의 유해반응에 의하여 쉽게 활성화되어 NO, PGE 2 와 같은 전염증매개체를 분비하고 이들의 조절이상 또는 과도한 활성화는 알츠하이머질환, 파킨슨씨병 등의 심각한 신경질환을 일으키는 것으로 보고되어 있다. 16) 또한, iNOS와 COX-2는 각각 NO와 PGE 2 의 생성에 관여하는 것으로 알려져 있다. 17 , 18) 따라서, 미세아교세포에서 전염증매개체의 생성을 감소시키는 물질의 발견은 퇴행성 뇌질환 치료제 개발에 있어서 중요한 목표 중의 하나로 인식되고 있다.
본 연구에서는 선행연구를 통해 몰약 물 추출물이 LPS로 자극한 BV2 세포에서 NO생성을 억제하는 효과가 있음을 확인하였고, 이 결과를 바탕으로 물 추출물을 분획하여 얻은 EtOAc, BuOH, 물 분획물에 대하여 LPS로 자극한 BV2 세포에서 NO 억제효과를 검토한 결과 EtOAc 분획물이 유의한 효과를 나타냈다. 이 결과를 바탕으로 EtOAc 분획물의 일부인 3.5 g을 Sephadex LH-20, RP-18 및 silica gel column chromatography를 실시하여 하나의 화합물을 분리하였고, 이 물질의 1 H NMR과 13 C NMR 스펙트럼 data를 문헌 19) 과 비교하여 eudesmane type sesquiterpene계 물질인 1 β ,6 α -dihydroxyeudesm-4(15)-ene (DE)으로 동정하였다( Fig. 1 A).
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Chemical structure of DE (A) and effects of DE on cell viability (B). BV2 microglia were incubated for 24 hr with various concentrations of DE (5-160 μM). Cell viability was determined as described under Materials and methods. Data represent the mean values of three experiments±SD.
몰약으로부터 분리한 DE가 미세아교세포에서 항염증 효과를 나타내는지 확인하기 위하여 LPS로 유도된 BV2 미세아교세포에서의 염증관련인자들을 측정하였다. 먼저 MTT assay를 이용하여 DE의 BV2 미세아교세포에서의 독성을 확인한 결과, 5-160 μM의 농도 범위에서 세포독성을 나타내지 않았다( Fig. 1 B). 이 결과를 바탕으로 160 μM을 최고농도로 설정하여 실험을 진행하였다. 즉, LPS를 BV2 세포에서의 염증유도물질로 사용하여 전염증매개체인 NO와 PGE 2 의 생성량을 측정하기 위하여 nitrite assay와 EIA실험을 실시하였다. BV2 미세아교세포에 DE를 20, 40, 80, 160 μM의 농도로 각각 처리한 후, 3시간 동안 CO 2 incubator에서 배양하고 LPS(1 μg/ml)를 처리하였을 때, DE는 농도의존적으로 NO와 PGE 2 의 생성을 감소시켰다( Fig. 2 ).
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Effects of DE on nitrite (A), PGE2 (B) production in BV2 microglia stimulated with LPS. Cells were pre-treated for 3 hr with indicated concentrations of DE, and stimulated 24 hr with LPS (1 μg/ml). The concentration of nitrite, PGE2 were determined as described under Materials and methods. Data represent the mean values of three experiments±SD. *p<0.05 compared to the group treated with LPS.
iNOS는 L-arginine으로부터 NO를 생성시키는 효소로 알려져 있으며, 과도하게 생성된 NO는 염증부위에서 해당 조직의 염증성 파괴를 유발하는 것으로 알려져 있다. 20) 또한, COX에 의해 합성되는 prostaglandin류 역시 염증반응의 매개역할을 수행하는 중요한 물질이며, COX-2는 염증과정 동안 전염증매개체인 PGE 2 를 다량으로 생성시키는 것으로 보고되어 있다. 21) 저자들은 DE의 NO와 PGE 2 생성 억제효과가 이들 단백질의 조절에 의한 것인지를 확인하고자 하였다. BV2 미세아교세포에 DE를 20, 40, 80, 160 μM의 농도로 3시간 동안 전처리한 다음, LPS(1 μg/ml)를 처리하고 24시간 후에 iNOS와 COX-2의 단백질발현을 western blot analysis를 통하여 관찰하였다. DE는 NO와 PGE 2 생성 억제와 유사한 양상으로 농도의존적인 iNOS와 COX-2의 단백질발현 감소를 나타냈다( Fig. 3 ). 이상의 결과로부터 몰약의 sesquiterpene계 성분인 DE는 iNOS와 COX-2 단백질 발현의 감소를 통하여 NO 및 PGE 2 의 생성을 감소시킴으로써 LPS로 유발한 미세아교세포의 염증을 억제하는 것으로 추정된다.
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Effects of DE on protein iNOS (A) and COX-2 (B) expression in BV2 microglia stimulated with LPS. Cells were pretreated for 3 hr with indicated concentrations of DE, and 24 hr with LPS (1 ìg/ml). Western blot analyses were performed as described in Materials and methods, and representative blots of three independent experiments are shown. *p<0.05 compared to the group treated with LPS.
결 론
몰약 물 추출물의 EtOAc 분획물에 대하여 각종 컬럼 크로마토그래피를 실시하여 sesquiterpene계 물질인 1 β ,6 α -dihydroxyeudesm-4(15)-ene(DE)을 분리, 동정하였다. DE는 LPS로 자극한 BV2 미세아교세포에서 전염증매개체인 NO와 PGE 2 의 생성을 각각 농도의존적으로 감소시켰으며, 이는 iNOS와 COX-2 단백질의 발현을 감소시키는 것에 의하여 기인되는 것으로 추정된다. 따라서, 몰약의 성분인 DE는 퇴행성 뇌질환의 원인 중의 하나인 과도한 염증반응을 억제할 수 있는 후보물질로 연구가치가 있다고 생각된다.
Acknowledgements
본 연구는 산업통상자원부와 한국산업기술진흥원의 지역 특화산업육성사업 (R0002267)으로 수행된 연구결과입니다.
References
생약학교재편찬위원회 (2014) 생약학 동명사 서울 674 -
Brieskorn C. H. , Noble P. (1982) Constituents of the essential oil of myrrh. Planta Med. 44 87 - 90    DOI : 10.1055/s-2007-971408
Craveiro A. , Corsano S. , Proietti G. , Strappaghetti G. (1983) Constituents of essential oil ofCommiphora guidotti. Planta Med. 48 97 - 98    DOI : 10.1055/s-2007-969896
Marongiu B. , Piras A. , Porcedda S. , Scorciapino A. (2005) Chemical composition of the essential oil and supercritical CO2extract ofCommiphora myrrha(Nees) Engl. and ofAcorus calamusL. J. Agric. Food Chem. 53 7939 - 7943    DOI : 10.1021/jf051100x
Chen Y. , Zhou C. , Ge Z. , Liu Y. , Liu Y. , Feng W. , Li S. , Chen G. , Wei T. (2013) Composition and potential anticancer activities of essential oils obtained from myrrh and frankincense. Oncol. Lett. 6 1140 - 1146
Siddiqui M. Z. , Thomas M. , Prasad N. (2013) Physicochemical characterization and antioxidant activity of essential oils of Guggul (Commiphora wightii) collected from Madhya Pradesh. Indian J. Pharm. Sci. 75 368 - 372    DOI : 10.4103/0250-474X.117422
Fraternale D. , Sosa S. , Ricci D. , Genovese S. , Messina F. , Tomasini S. , Montanari F. , Marcotullio M. C. (2011) Anti-inflammatory, antioxidant and antifungal furanosesquiterpenoids isolated fromCommiphora erythraea(Ehrenb.) Engl. resin. Fitoterapia 82 654 - 661    DOI : 10.1016/j.fitote.2011.02.002
Fujihara M. , Muroi M. , Tanamoto K. , Suzuki T. , Azuma H. , Ikeda H. (2003) Molecular mechanisms of macrophage activation and deactivation by lipopolysaccharide: Roles of the receptor complex. Pharmacol. Ther. 100 171 - 194    DOI : 10.1016/j.pharmthera.2003.08.003
Doyle S. L. , O’Neill L. A. (2006) Toll-like receptors: From the discovery of NFkappaB to new insights into transcriptional regulations in innate immunity. Biochem. Pharmacol. 72 1102 - 1113    DOI : 10.1016/j.bcp.2006.07.010
Brown G. C. , Bal-Price A. (2003) Inflammatory neurodegeneration mediated by nitric oxide, glutamate, and mitochondria. Mol. Neurobiol. 27 325 - 355    DOI : 10.1385/MN:27:3:325
Good P. F. , Werner P. , Hsu A. , Olanow C. W. , Perl D. P. (1996) Evidence of neuronal oxidative damage in Alzheimer's disease. Am. J. Pathol. 149 21 - 28
Pratico D. , Trojanowski J. Q. (2000) Inflammatory hypotheses: novel mechanisms of Alzheimer's neurodegeneration and new therapeutic targets. Neurobiol. Aging. 21 441 - 445    DOI : 10.1016/S0197-4580(00)00141-X
Hald A. , Lotharius J. (2005) Oxidative stress and inflammation in Parkinson's disease: is there a causal link. Exp. Neurol. 193 279 - 290    DOI : 10.1016/j.expneurol.2005.01.013
Liao C. H. , Sang S. , Liang Y. C. , Ho C. T. , Lin J. K. (2004) Suppression of inducible nitric oxide synthase and cyclooxygenase-2 in downregulating nuclear factor-kappa B pathway by Garcinol. Mol. Carcinog. 41 140 - 149    DOI : 10.1002/mc.20050
Gonzalelz-Scarano F. , Baltuch G. (1999) Microglia as mediators in inflammatory and degenerative disease. Annu. Rev. Neurosci. 22 219 - 240    DOI : 10.1146/annurev.neuro.22.1.219
Xu K. , Xu Y. H. , Chen J. F. , Schwarzschild M. A. (2010) Neuroprotection by caffeine: time course and role of its metabolites in the MPTP model of Parkinson’s disease. Neuroscience. 167 475 - 481    DOI : 10.1016/j.neuroscience.2010.02.020
Nathan C. F. , Hibbs JB. (1991) Role of nitric oxide synthesis in macrophage antimicrobial activity. Curr. Opin. Immunol. 3 65 - 70    DOI : 10.1016/0952-7915(91)90079-G
Chen Y. C. , Shen S. C. , Lee W. R. , Hou W. C. , Yang L. L. , Lee T. J. (2001) Inhibition of nitric oxide synthase inhibitors and lipopolysaccharide induced inducible NOS and cyclooxygenase-2 gene expressions by rutin, quercetin, and quercetin pentaacetate in RAW264.7 macrophages. J. Cell. Biochem. 82 537 - 548    DOI : 10.1002/jcb.1184
Taichi O. , Keiji I. , Sachiyo N. , Masaru S. , Sachi S. (1987) Studies on the sesquiterpenes fromAmbrosia elatiorLINNE. Chem. Pharm. Bull. 35 2272 - 2279    DOI : 10.1248/cpb.35.2272
Hou Y. C. , Janczuk A. , Wang P. G. (1999) Current trends in the development of nitric oxide donors. Curr. Pharm. Des. 5 417 - 441
Hammond R. A. , Hannon R. , Frean S. P. , Armstrong S. J. , Flower R. J. , Bryant C. E. (1999) Endotoxin induction of nitric oxide synthase and cyclooxygenase-2 in equine alveolar macrophages. Am. J. Vet. Res. 60 426 - 431