Advanced
Whitening Efficacy of Water Soluble Royal Jelly Removed Allergenic Protein
Whitening Efficacy of Water Soluble Royal Jelly Removed Allergenic Protein
Korean Journal of Pharmacognosy. 2014. Sep, 45(3): 262-267
Copyright © 2014, The Korean Society of Pharmacognosy
  • Received : September 01, 2014
  • Accepted : September 23, 2014
  • Published : September 30, 2014
Download
PDF
e-PUB
PubReader
PPT
Export by style
Article
Author
Metrics
Cited by
TagCloud
About the Authors
상미 한
sangmih@korea.kr
정민 김
세건 김
혜리 장
주홍 여
인표 홍
순옥 우

Abstract
Royal jelly composes of many components, especially protein. Protein is a major factor which cause allergy. We focused on water soluble royal jelly (WSRJ) that was removed allergy - inducing protein. 10-hyroxy-2-decenoic acid content of WSRJ is 2.42 g/100 g, which is double compared to that of lypophilized RJ. To further access WSRJ as a cosmetic ingredient and potential external treatment for topical use, we investigated its ability to inhibit tyrosinase activity and melanin biosynthesis on melanogenesis in B16F1 melanoma cells. We found that WSRJ increased the cell viability in B16F1 melanoma cell and WSRJ (1~10 mg/ml) inhibited melanin synthesis in with 10 nM α-melanocyte-stimulating hormone (α-MSH) for 48 h. WSRJ inhibited direct tyrosinase activity, which decreased melanin synthesis in α-MSH stimulated B16F1 melanoma cells. Thease findings suggest that WSRJ induces the down regulation of melanogenesis by inhibiting tyrosinase activation.
Keywords
재료 및 방법
공시시료 −시험용 로열젤리는 2013년 강원도 철원지역에서 생산된 생 로열젤리를 사용하였고, 알러지 유발단백질제거 및 로열젤리의 수용화과정은 Guo 등 16) 의 방법을 변형하였다. 생 로열젤리를 동결건조하는 단계, 에탄올 추출, 그리고 중성화 단계를 거쳐 알러지 유발단백질 제거 수용성 로열젤리를 획득하였다. 17) 알러지를 일으키는 로열젤리의 주요 단백질의 변화를 살펴보기 위해 SDS-PAGE(10% gels)을 이용하여 단백질 전기영동을 수행 후 Coomassie Brilliant Blue R-250 염색시약을 사용하여 확인하였다.
10-HDA 함량분석 −로열젤리의 주성분으로 알려진 10-HDA 함량이 알러지 유발 단백질을 제거한 수용성로열젤리(WSRJ)에서 유지 될 수 있는 지를 확인하고자 HPLC(LC20 System, Shiseido, Tokyo, Japan)를 이용하여 분석하였다. 컬럼은 YMC 사의(ODS H-80, 250×46 mm, I.D. S-4 μm, Tokyo, Japan)을 사용하였으며 이동상 용매로는 메탄올:인산화암모늄(3:7 비율)이 혼합된 용매를 사용하였다. 흡광도는 UV-Vis detector를 이용하여 210 nm에서 확인하였고, 시료는 5 μl를 주입하였으며, 운행시간은 20분, 유속은 1 ml/min이었다.
Tyrosinase 저해활성 측정 − L-DOPA를 사용하여 trysinase 활성을 측정하였다. 18) L-DOPA는 0.2 mg/ml의 농도로 potassium phosphate buffer에 완전히 녹인 후 각각의 농도별 수용성로열젤리와 혼합한 용액에 mushroom tyrosinase 를 첨가하여 37℃에서 2분간 반응시켜 반응액 중에 생성된 DOPA chrome을 475 nm에서 측정하였다.
B16F1세포 배양 및 생존율 측정 −마우스 흑색 B16F1 세포주는 한국세포주은행(서울, 한국)에서 구입하여 사용하였으며, 세포는 10% fetal bovine serum(Gibco BRL, MD, USA), 1% penicillin/streptomycin(Gibco BRL, MD, USA)이 첨가된 Dulbecco’s modified Eagle’s medium(DMEM) 배지에 5% CO 2 배양기에서 37℃로 배양하였다. 정제봉독과 멜라닌 합성을 유발하기 위해 사용되는 α-melanocyte stimulating hormone(MSH, Sigma, USA)에 대한 B16F1 세포 생존율을 측정하기 위하여 3-(4,5-dimethythiazol-2-yl)-2-5-diphenytetrazolium bromide(MTT) 환원 방법은 Chung 등 19) 의 방법을 변형하여 측정하였다. B16F1 세포를 96 well plate에 5×10 3 cells/ml 농도로 분주하여 24시간 배양 후 각각 다양한 농도로 회석한 수용성 로열젤리와 α-MSH를 처리하였다. 24시간 동안 배양 후 배지를 제거한 다음 50 μl MTT 용액을 첨가하여 3시간 배양하고 DMSO 200 μl를 처리한 다음 570 nm의 흡광도로 측정하였다.
멜라닌 저해 활성 측정 − Hosoi 등 20) 의 방법을 이용하여 멜라닌 생성량을 측정하였다. B16F1 세포를 6 well plate에 5×10 5 cells/well의 농도로 plates에 분주한 후 24시간 후 세포독성을 갖지 않는 수용성 로열젤리를 농도별로 처리하여 72시간 동안 배양하였다. 세포를 수집하여 1 N NaOH 용액 1ml을 첨가하고 잘 섞어준 후 100℃에서 30분 동안 용해시킨 후, 16,000×g에서 20분 동안 원심분리하여 얻어진 상층액의 흡광도를 405 nm에서 측정하였다.
세포내 Tyrosinase 저해 활성 측정 − B16F1 세포를 6 well plate에 5×10 5 cells/well의 농도로 plates에 분주한 후, 24시간 후 세포독성을 갖지 않는 수용성 로열젤리 농도별로 처리하여 72시간 동안 배양하였다. 배양 세포를 수거하여, 원심분리 후 세포 침전물을 만들고 lysis buffer(0.1M sodium phosphate buffer, 0.2 mM phenylmethylsulfonyl fluoride, 1% triton X-100)를 가하였다. 얼음에 방치하여 세포를 파괴시키고, 원심분리한 후 상층액을 취하여 효소활성 즉정에 사용하였다. 각 농도별 수용성 로열젤리 반응액(12.5 mM LDopa, 1.5 mM L-tyrosine, 67mM sodium phosphate buffer(pH 6.8))에 넣고 37℃에서 1시간 동안 반응시킨 후 흡광도를 이용하여 405 nm에서 측정하였다.
통계처리 −실험결과는 SPSS(Ver 18.0, Illinois, USA) 통계 프로그램을 이용하여 분석하였으며 결과는 평균±평균의 표준오차로 표시하였다. 대조군과 처리군간의 효과 비교는 One way Analysis of variance(ANOVA)의 Duncan’s multiple range test 를 통해 각 실험군 간의 유의성을 p <0.05 수준에서 확인하였다.
결과 및 고찰
수용성 로열젤리 확인 −로열젤리는 옅은 노랑색을 띠며 신맛이 나는 특징이 있는 천연 재료로써 예로부터 항암, 혈압저하, 항염 등과 같은 질병에 효과가 있는 것으로 널리 알려져 있으나, 1 , 21 - 23) 알러지를 유발할 수 있는 단백질 1번(분자량 55 kDa)과 2번(47 kDa)과 2번으로 인해 면역력이 약한 노인이나 유아의 식이는 제한하는 경우가 있다. 이러한 문제점을 해결하기 위하여 개발한 알레지 유발 단백질을 제거한 수용성 단백질의 단백질 1번과 2번(47 kDa) 단백질의 제거를 SDS-PAGE를 이용하여 확인하였다( Fig. 1 ). 생 로열젤리와 수용성 로열젤리의 단백질 변화를 살펴본 결과, 생로열젤리의 농도 0.01 g/ml에서는 단백질이 48-63 kDa의 위치에서 진하게 발색됨을 확인할 수 있었으나( Fig. 1 A), 수용성 로열젤리의 농도 0.1 g/ml에서는 생 로열젤리보다 10배 높은 농도로 실시했는데도 불구하고, 같은 위치에서 단백질이 약하게 나타났다( Fig. 1 B). 10-HDA는 로열젤리의 주요 지표물질로서 HPLC 분석을 통해 동결건조된 로열젤리와 수용성 로열젤리의 10-HDA 함량을 분석한 결과( Table I ), 동결건조된 로열젤리는 100 g 당 1.3 g, 수용성 로열제리는 2.35 g으로 10-HDA의 함량이 유의적인 차이가 났으며, 수용성 로열젤리의 경우 55% 증가하는 것을 확인할 수 있었다. 또한 그림 2에서 보는 바와 같이 수용성 로열젤리의 물에 대한 용해도가 100%임을 확인 할 수 있었다. 따라서 기존 생 로열젤리가 물에 잘 녹지 않는 성질을 보완할 수 있었다.
PPT Slide
Lager Image
Protein profile of raw royal jelly (A) and WSRJ (B) by SDS-PAGE. Protein was separated with 10% gels and stained with coomassie blue. Concentration of raw RJ protein and WSRJ protein was 0.01 g/ml, 0.1 g/ml, respectively. C is soluble process of WSRJ
10-HDA contents of lypophilized royal jelly and WSRJ
PPT Slide
Lager Image
*P<0.05 compared with lypophilized RJ
Mushroom Tyrosinase 활성에 미치는 영향 − 수용성 로열젤리의 멜라닌 생성 억제 기전이 tyrosinsase에 직접 작용하는지를 확인하고자 tyrosinsase의 기질인 L-DOPA를 이용하여 mushroom tyrosinase의 활성을 측정하였다. Tyrosinase는 L-tyrosine을 L-DOPA로 전화시키고 이어서 L-DOPA를 L-DOPA quinone로 산화시킨다고 알려져 있다. 24) 수용성로 열젤리는 L-DOPA와 L-tyrosine 모두에서 tyrosinase의 활성을 억제하는 것으로 확인되었다( Fig. 2 ). 이 실험 결과로 미루어 수용성로열젤리는 tyrosinase에 기질이 결합하는 부위에 작용하여 기질이 tyrosinase에 결합하는 것을 방해하는 것으로 사료된다.
PPT Slide
Lager Image
Effect of WSRJ on tyrosinase activity. Tyrosinase activity was determined using mushroom tyrosinase and measuring the absorbance of dopaquinone that is produced by an oxidative reaction with mushroom tyrosinase as the enzyme and LDOPA as the enzyme substrate. Data are presented as mean ± SEM of five independent experiments. Different letters indicate a significant difference with p<0.05.
세포의 생존율 −본 실험에 사용할 수용성 로열젤리의 농도는 MTT assay를 통하여 세포 독성을 살펴보았다. 멜라닌 생성을 촉진하는 α-MSH의 처리농노는 10 nM에서 멜라닌 생성이 가장 많았으며 세포독성을 유발하지 않았다. 15) 10 nM의 α-MSH가 처리된 B16F1 melanoma 세포에 다양한 농도(1, 5, 10, 50, 100 μg/ml)의 수용성 로열젤리를 24시간 동안 처리하였다. 세포독성은 모든 처리구에서 관찰되지 않았으며, 농도가 증가함에 따라 세포 증식이 활성화 되는 경향을 보였다( Fig. 3 ). 이러한 결과를 바탕으로 본 실험에서는 10 nM의 α-MSH로 멜라닌 형성을 촉진시킨 B16F1세포에100 μg/ml 이하의 수용성 로열젤리를 처리한 후 멜라닌 합성 및 tyrosinase의 단백질 발현에 미치는 영향을 조사하였다.
PPT Slide
Lager Image
Effect of WSRJ on cell viability. B16F1 cells were treated with 10 nM α-MSH for 48 hr and then with WSRJ at 1-100 μg/ml. Cell viability was determined by absorbance at 570 nm using a microplate reader. Data are presented as mean ± SEM of five independent experiments. Different letters indicate a significant difference with p<0.05.
멜라닌 생성 억제 효과 −멜라닌은 세포 내의 소기관인 ribosome에서 tyrosinase라는 효소의 생합성에서 합성되기 시작한다. 이 효소의 작용으로 아미노산의 일종인 tyrosine에서 몇 단계의 합성을 거쳐, 기저층의 멜라닌 세포 melanin site라는 흑색소포 표면에 침착하여 검고 갈색의 작은 멜라닌 입자가 만들어 진다. 25) 화장품의 원료로 사용되고 있는 로열젤리는 멜라닌 합성을 억제하는 것으로 알려져 있다. 따라서 알레지 유발 단백질원을 제거한 수용성 로열젤리에서도 멜라닌 합성을 억제 할 수 있는지를 살펴보기 위해 B16F1 melanoma 세포에서의 멜라닌 생합성 저해활성을 측정하였다( Fig. 4 ). 그림 4A에서 보는 바와 같이 α-MSH 처리군은 매우 진하게 멜라닌 생성 정도를 확인할 수 있었으나, 양성대조군과 모든 농도의 수용성 로열젤리 처리군에서 멜라닌 생성이 매우 약하게 확인되었다. 특히 5 μg/ml 수용성 로열젤리 처리군에서 멜라닌 합성은 양성대조군으로 사용한 알부틴(arbutin)과 같은 수준으로 억제하는 것으로 확인되었다( Fig. 4 B). 이러한 결과로 알러지 유발 단백질이 제거된 수용성로열젤리에서도 생 로열젤리와 같은 멜라닌 합성을 억제하는 기능이 확인되었다.
PPT Slide
Lager Image
Effect of WSRJ on melanin synthesis. B16F1 melanoma cells were stimulated with 10 nM α-MSH for 48 hr and the medium was exchanged with fresh medium containing or not containing various concentrations of WSRJ for 24 hr. (A) Photograph of cell pellets. (B) Synthesized melanin contents. Data are presented as mean ± SEM of five independent experiments. Different letters indicate a significant difference with p<0.05.
세포내 Tyrosinase의 단백질 발현 억제 효과 −멜라닌 생합성 신호전달 체계에는 매우 다양한 신호전달물질이 관여하고 있다. 멜라닌은 몇 가지 신호전달 기전을 통하여 합성되는데, 그 중 cAMP/PKA 경로가 멜라닌 합성의 주요 경로로서 UV에 피부가 노출되었을 때 멜라닌 세포의 cAMP가 증가되고 하류 신호전달 물질인 PKA를 활성화시키며, CREB를 거쳐 MITF의 발현을 증가시켜, tyrosinase의 합성을 촉진시켜 멜라닌 합성을 증가시킨다. 26) 수용성로열젤리의 멜라닌 억제효과 검증을 위한 멜라닌 합성 관련인자인 tyrosinase 단백질 발현 정도를 측정하였다. 수용성로열젤리의 모든 처리 농도에서 세포 내 tyrosinase 발현이 크게 감소되는 것으로 확인되었다( Fig. 5 ). 이들 처리군에서의 발현량은 α-MSH 처리군에 비해 각각 28.3, 28.0% 정도 발현이 감소되었으며 이는 정상 대조군과 비슷한 수준이었다. 이러한 결과로 미루어 B16F1 세포주에서의 수용성 로열젤리에 의한 멜라닌 생성 감소는 세포 내 tyrosinase 저해 활성에 의한 것이 주요한 원인 중 하나로, 생 로열젤리에서의 멜라닌 생성 억제 기전과 동일한 것으로 판단된다.
PPT Slide
Lager Image
Effect of WSRJ on tyrosinase activity. Cellular tyrosinase activity was measured using B16F1 melanoma cell lysates. Data are presented as mean ± SEM of five independent experiments. Different letters indicate a significant difference with p<0.05.
수용성로열젤리는 유아나 면역력이 약한 사람이 복용했을 때 문제가 될 수 있는 알러지 유발 단백질을 제거하더라도 로열젤리가 갖고 있는 멜라닌 생성 억제효과는 유지되는 것으로 확인되었다. 로열젤리는 탁월한 항산화 효과와 미백, 피부보습 등의 기능이 밝혀져 화장품의 소재로 각광 받고 있다. 27 , 28) 화장품 시장의 경쟁과열로 인해 기존의 바르는 화장품만으로는 부진을 극복하기 어려워짐에 따라 최근 국내 이너뷰티(inner beauty) 시장은 매년 급성장해 먹는 화장품이 새로운 트랜드로 자리잡고 있다. 본 연구는 알러지 유발 단백질을 제거한 수용성로열젤리 개발로 기존의 로열젤리의 미백기능은 유지하면서도 알러지 발생 문제점을 해소할 수 있는 먹는 화장품 소재로서 널리 이용되리라 생각되어진다.
결 론
본 연구는 알러지를 유발할 수 있는 단백질을 제거한 수용성로열젤리가 기존의 로열젤리가 갖고 있는 멜라닌 생성억제효과를 유지할 수 있는지 살펴보고자 하였다. 수용성로열젤리 처리가 α-MSH로 멜라닌 합성이 유도된 B16F1 melanoma 세포에서 멜라닌과 tyrosinase의 단백질 생성 억제효과를 측정하였다. 그 결과 1 μg/ml이상의 수용성로열젤리를 처리했을 경우 α-MSH 처리군에 비해 멜라닌 합성을 억제하였으며, 멜라닌 합성 주요효소인 tyrosinase 단백질 발현 역시 효과적으로 억제하였다. 이는, 기존의 로열젤리와 같이 수용성로열젤리는 세포 내 tyrosinase의 발현 억제를 통하여 멜라닌 합성 억제효과를 나타내는 것으로 판단되며, 먹는 화장품 개발을 위한 알러지 유발을 제거한 기능성 물질로서의 가능성을 제시한다.
Acknowledgements
본 연구는 농촌진흥청 차세대바이오그린21사업(과제번호: PJ00906602)에 의하여 수행되었으므로 감사를 드립니다.
References
Fujiwara S. , Imai J. , Fujiwara M. , Yaeshima T. , Kawashima T. , Kobayashi K. (1990) A potent antibacterial protein in royal jelly. Purification and determination of the primary structure of royalisin. J. Biol. Chem. 265 11333 - 11337
Nagai T. , Inoue R. (2004) Preparation and the functional properties of water extract and alkaline extract of royal jelly. Food Chem. 84 181 - 186    DOI : 10.1016/S0308-8146(03)00198-5
Santos C. C. , Marcucci M. C. (2007) Quantitative determination of trans-10-Hydroxy-2-Decenoic Acid (10-HDA) in Brazilian royal jelly and commercial products containing royal jelly. J. Apicult. Res. 46 149 - 153
Sabatini A. G. , Marcazzan G. L. , Caboni M. F. , Bogdanov S. , Almeida-Muradian L. B. (2009) Quality and satndardisation of royal jelly. J. ApiProd. ApiMed. Sci. 1 1 - 6    DOI : 10.3896/IBRA.4.01.1.01
Krell R. (1996) Value-added products from beekeeping. FAO Food and Agriculture Organization of the United Nations Rome 409 -
Bincoletto C. , Eberlin S. , Figueiredo C. A. , Luengo M. B. , Queiroz M. L. (2005) Effects produced by royal jelly on haematopoiesis: relation with host resistance against Ehrlich ascites tumour challenge. Int. Immunopharmacol. 5 679 - 688    DOI : 10.1016/j.intimp.2004.11.015
Nakaya M. , Onda H. , Sasaki K. , Yukiyoshi A. , Tachibana H. , Yamada K. (2007) Effect of royal jelly on bisphenol A-induced proliferation of human breast cancer cells. Biosci. Biotechnol. Biochem. 71 253 - 255    DOI : 10.1271/bbb.60453
Leung R. , Ho A. , Chan J. , Choy D. , Lai C. K. (1997) Royal jelly consumption and hypersensitivity in the community. Clinical & Experimental Allergy 27 333 - 336    DOI : 10.1111/j.1365-2222.1997.tb00712.x
Taniguchi Y. , Kohno K. , Inoue S. , Koya-Miyata S. , Okamoto I. , Arai N. , Iwaki K. , Ikeda M. , Kurimoto M. (2003) Oral administration of royal jelly inhibits the development of atopic dermatitis-like skin lesions in NC/Nga mice. Int. Immunopharmacol. 3 1313 - 1324    DOI : 10.1016/S1567-5769(03)00132-2
Thien F. C. , Leung R. , Plomley R. , Weiner J. , Czarny D. (1993) Royal jelly-induced asthma. Med. J. Aust. 159 639 -
Takahama H. , Shimazu T. (2006) Food-induced anaphylaxis caused by ingestion of royal jelly. J. Dermatol. 33 424 - 426    DOI : 10.1111/j.1346-8138.2006.00100.x
Yonei Y. , Shibagaki K. , Tsukada N. , Nagasu N. , Inagaki Y. , Miyamoto K. , Suzuki O. , Kiryu Y. (1997) Case report: haemorrhagic colitis associated with royal jelly intake. J. Gastroenterol. Hepatol. 12 495 - 499    DOI : 10.1111/j.1440-1746.1997.tb00472.x
Mizutani Y. , Shibuya Y. , Takahashi T. , Tsunoda T. , Moriyama T. , Seishima M. (2011) Major royal jelly protein 3 as a possible allergen in royal jelly-induced anaphylaxis. J. Dermatol. 38 1079 - 1081    DOI : 10.1111/j.1346-8138.2010.01179.x
Kim J. M. , Han S. M. , Cho M. R. , Lee K. G. , Lee M. L. , Lee M. Y. , Woo S. O. , Hong I. P. , Sim H. S. , Choi Y. S. (2013) Characterization of water soluble royal jelly removed allergenic protein. Korean J. Apiculture 28 19 - 23    DOI : 10.3904/kjm.2013.84.1.19
Han S. M. , Lee K. G. , Yeo J. H. , Lee M. Y. (2010) Effect of melanin inhibitory effect of royal jelly from Korea in mouse melanoma cells Korean J. Apiculture 25 123 - 128
Guo H. , Ekusa A. , Iwai K. , Yonekura M. , Takahata Y. , Morimatsu F. (2008) Royal jelly peptides inhibit lipid peroxidation in vitro and in vivo. J. Nutr. Sci. Vitaminol (Tokyo) 54 191 - 195    DOI : 10.3177/jnsv.54.191
Han S. M. , Lee K. G. , Yeo J. H. , Kweon H. Y. , Woo S. O. (2007) A simplified purificating method of bee venom. Patent.
Yagi A. , Kanbara T. , Morinobu N. (1987) Inhibition of mushroom-tyrosinase by aloe extract. Planta Med. 53 515 - 517    DOI : 10.1055/s-2006-962798
Chung M. J. , Walker P. A. , Brown R. W. , Hogstrand C. (2005) ZINC-mediated gene expression offers protection against H2O2-induced cytotoxicity. Toxicol. Appl. Pharmacol. 205 225 - 236    DOI : 10.1016/j.taap.2004.10.008
Hosoi J. , Abe E. , Suda T. , Kuroki T. (1985) Regulation of melanin synthesis of B16 mouse melanoma cells by 1 alpha, 25-dihydroxyvitamin D3 and retinoic acid. Cancer Res. 45 1474 - 1478
Okamoto I. , Taniguchi Y. , Kunikata T. , Kohno K. , Iwaki K. , Ikeda M. , Kurimoto M. (2003) Major royal jelly protein 3 modulates immune responses in vitro and in vivo. Life Sci. 73 2029 - 2045    DOI : 10.1016/S0024-3205(03)00562-9
Kohno K. , Okamoto I. , Sano O. , Arai N. , Iwaki K. , Ikeda M. , Kurimoto M. (2004) Royal jelly inhibits the production of proinflammatory cytokines by activated macrophages. Biosci. Biotechnol. Biochem. 68 138 - 145    DOI : 10.1271/bbb.68.138
Tokunaga K. H. , Yoshida C. , Suzuki K. M. , Maruyama H. , Futamura Y. , Araki Y. , Mishima S. (2004) Antihypertensive effect of peptides from royal jelly in spontaneously hypertensive rats. Biol. Pharm. Bull. 27 189 - 192    DOI : 10.1248/bpb.27.189
Hearing V. J. , Jimenez M. (1989) Analysis of mammalian pigmentation at the molecular level. Pigment Cell Res. 2 75 - 85    DOI : 10.1111/j.1600-0749.1989.tb00166.x
Urabe K. , Nakayama J. , Hori Y. (1998) Mixed epidermal and dermal hypermelanoses, in The pigmentary System: Physiology and Pathophysiology,” eds. Norlund, J. J., Boissy, R. E., Hearing, V. J., King, R. A. and Ortonne, J. P. Oxford University Press New York 909 -
Mallick S. , Singh S. K. , Sarkar C. , Saha B. , Bhadra R. (2005) Human placental lipid induces melanogenesis by increasing the expression of tyrosinase and its related proteins in vitro. Pigment Cell Res. 18 25 - 33    DOI : 10.1111/j.1600-0749.2004.00193.x
Viuda-Martos M. , Ruiz-Navajas Y. , Fernández-López J. , Pérez-Alvarez J. A. (2008) Functional properties of honey, propolis, and royal jelly. J. Food Sci. 73 R117 - 124    DOI : 10.1111/j.1750-3841.2008.00966.x
Silici S. , Ekmekcioglu O. , Eraslan G. , Demirtas A. (2009) Antioxidative effect of royal jelly in cisplatin-induced testes damage. Urology 74 545 - 551    DOI : 10.1016/j.urology.2009.05.024