The anti-melanogenic substance was isolated from the root of
Angelica gigas
Nakai by silica gel column chromatography, preparative HPLC and TLC. As a result of the structure analysis by mass,
1
H-NMR, and
13
C-NMR spectrometry, the compound was identified as demethylsuberosin. Demethylsuberosin reduced melanin contents of B16F1 melanoma cells in a dose-dependent manner and decreased to about 74% at a concentration 5 μg/ml. Demethylsuberosin inhibited the expression in microphthalmia associated transcription factor (MITF), tyrosinase, tyrosinase related protein-1 (TRP-1), and tyrosinase related protein-2 (TRP-2) in melanocytes. These results suggest that the whitening activity of demethylsuberosin may be due to the inhibition of the melanin synthesis by down-regulation of MITF, tyrosinase, TRP-1 and TRP-2 expression. Thus, our results provide evidence that demethylsuberosin might be useful as a potential skin-whitening agent.
재료 및 방법
실험 재료
−본 실험에서 사용한 참당귀(
Angelica gigas
NaKai)는 한국 경북에서 재배한 생약을 옴니허브에서 구입하여, 형태학적 평가를 통하여 동정하였다. 참당귀 표본(KOR070)은 한국콜마 소재연구소 BIO소재개발팀 표본실에 보관하였다.
시약 및 기기
−참당귀로부터 유효성분의 분리와 정제를 위해 silica gel column chromatography(silica gel 60, Merck, 230~400 mesh)를 실시하였다. TLC 분석에는 Silica gel 60 F254(precoated, Merck)를 사용하고 이때 detection reagent로는 10% H
2
SO
4
용액을 사용하였다. 참당귀로부터 분리한 화합물들의 구조 동정을 위한 NMR 측정에는 JEOL ECA-500을 사용하였으며, CDCl
3
를 용매로 사용하였고, 내부 표준물질로 사용한 tetramethylsilane(TMS)를 기준으로 δ(ppm)으로 나타내었다. Neutral red는 Sigma(USA), Dulbeco's modified Eagle's medium(DMEM)은 Thermo scientific(USA), fetal bovine serum(FBS)과 Antibiotic-Antimyotic(100X)은 Gibco(USA) 제품을 사용하였다. Tyrosinase, TRP-1, TRP-2,
β
-actin 항체는 Santacruze Biotechnology(USA)에서 구입하여 사용하였다. 본 실험에 사용된 기기는 microplate reader(Bio-rad, USA)와 Chemi-Doc(ATTO, Japan)을 사용하였다.
추출 및 분리
−참당귀 뿌리 500 g을 잘게 분쇄한 후에 2 L의 MeOH을 가하여 항온조에서 3시간 동안 2회에 걸쳐 환류 냉각하여 추출하고, 여과 및 감압 농축하여 참당귀추출물 150 g을 수득하였다. 참당귀추출물은 증류수에 용해시키고 동량의 Et
2
O를 가하여 3회에 걸쳐 용매 분배한 후 Et
2
O 층 45 g을 얻었다. Et
2
O 분획물 30 g을 silica gel column chromatography(이동상;
n
-hexane:EtOAc=20:1, 15:1, 10:1, 5:1, 2.5:1, 0:1, v/v)를 실시하여 10개의 subfraction(Fr. 1-10)으로 나누었다. Fr. 7을 medium pressure liquid chromatography(이동상;
n
-hexane:EtOAc=8:1, 7:1, 6:1, v/v) 및 prep. TLC(CHCl
3
:
n
-hexane:EtOAc=5:5:2)를 반복 실시하여 화합물
1
(170 mg)을 순수하게 분리하였다.
화합물 1
− Light yellow gum,
1
H-NMR(CDCl
3
, 500 MHz) δ: 1.74 (3H, s, Me-4'), 1.77 (3H, s, Me-5'), 3.36 (2H, d,
J
= 7.2 Hz, H-1'), 5.29 (1H, t,
J
= 7.2 Hz, H-2'), 6.21 (1H, d,
J
= 9.5 Hz, H-3), 6.89 (1H, s, H-8), 7.17 (1H, s, H-5), 7.61 (1H, d,
J
= 9.5 Hz, H-4);
13
C-NMR (CDCl
3
, 125 MHz) δ: 17.9 (C-5), 25.8 (C-4), 28.7 (C-1), 103.3 (C-8), 112.4 (C-10), 112.6 (C-3), 120.9 (C-2), 125.3 (C-6), 128.4 (C-5), 135.4 (C-3), 143.9 (C-4), 154.2 (C-9), 158.3 (C-2), 162.0 (C-7).
세포주의 배양
− ATCC에서 구매한 mouse melanoma (B16F1) 세포를 10% fetal bovine serum(FBS), 5% antibiotic-antimyotic을 첨가한 Dulbeco's modified Eagle's medium(DMEM)으로 배양기에서 37℃, 5% CO
2
조건으로 배양하였다.
세포독성 측정
−본 실험에서 mouse melanoma 세포에 대한 시료의 유효농도를 결정하기 위해 세포독성측정(NRU assay)을 진행하였다. B16F1 세포를 10% fetal bovine serum(FBS), 5% antibiotic-antimyotic을 첨가한 Dulbeco's modified Eagle's medium(DMEM)으로 배양기에서 37℃, 5% CO
2
조건으로 배양한다. 배양된 mouse melanoma 세포를 96 well plate에 각각 5×10
4
cell/wells로 접종하고 24 hr 배양한다. 동일 배지로 교체한 후 시료를 농도별로 희석하여 처리한 후 72 hr 동안 CO
2
incubator에서 배양한다. 5 mg/ml neutral red 용액과 10% fetal bovine serum(FBS), 5% antibiotic-antimyotic을 첨가한 DMEM을 혼합하여 세포에 200 μl씩 처리한 후 2 hr 배양한다. 1% CaCl
2
& 1% formaldehyde 용액 넣은 후 1 min 교반하고, 1% Acetic acid & 50% EtOH 용액 넣은 후 15 min 교반한 후 microplate reader(Bio-rad, USA)로 570 nm에서 흡광도를 측정하였다.
멜라닌 정량
− B16F1 세포를 10% fetal bovine serum (FBS), 5% antibiotic-antimyotic을 첨가한 DMEM으로 배양기에서 37℃, 5% CO
2
조건으로 배양한 후 6 well plate에 5×10
4
cell/wells로 접종하고 세포가 바닥에 80% 이상 자랄 때까지 배양한다. 200 nM
α
-melanocyte stimulating hormone (
α
-MSH)이 있는 배지조건에 시료를 농도별로 처리한 후 72 hr 배양하였다. 양성대조군으로는 알부틴을 사용하였다. 배양된 세포의 배지를 제거하고 PBS로 세척한 후 trypsination 하여 세포를 회수하였다. 회수한 세포는 1,000 rpm으로 5 min 원심분리 한 다음 상등액을 제거하여 pellet을 얻었다. 이 pellet은 70℃에서 1 hr 동안 건조한 후 10% DMSO가 함유한 1M NaOH 용액 400 μl 넣어 멜라닌을 용해시킨 후, microplate reader(Bio-rad, USA)로 490 nm에서 흡광도를 측정하였다.
Tyrosinase, TRP-1, TRP-2와 MITF의 단백질 발현 저해 효과
−시료를 72 hr 동안 처리한 B16F1 melanoma 세포를 PRO-PREP protein extraction solution(Intron biotechnology, Korea)으로 용해하고 원심분리하였다. 여기서 얻은 상층액을 8% SDS-PAGE를 이용해 전기영동하고 PVDF membrane으로 이전시켰다. 5% skim milk가 함유된 tris 완춘용액으로 1 hr blocking한 후, tyrosinase, TRP-1, TRP-2, MITF,
β
-actin 1차, 2차 항체와 각각 반응시켰다. 반응 후 Immobilon Western Chemiluminescent HRP substrate (Millipore, USA)를 이용하여 1~3 min 반응시킨 후 Chemi-Doc(ATTO, Japan)으로 확인하였다.
통계 처리
−본 실험의 통계처리는 Minitab 17을 사용하였다. 각 실험군의 결과는 평균치와 표준편차로 나타내었으며, 각 실험군의 간의 결과는 2-표본 t 검정을 사용하여 분석하고 유의적인 차이가 있는 항목에 대해서만 검정하였다. 실험군 간의 차이는 95% 수준(p<0.05)에서 유의성 있는 것으로 하였다.
결과 및 고찰
분리한 Demethylsuberosin 화합물의 구조결정
− 화합물
1
은 옅은 노란색 gum의 형태로 분리되었으며, ELSD를 이용한 HPLC 분석 결과, 순도는 95% 이상으로 확인되었다.
1
H-NMR 스펙트럼의 δ 6.21, 7.61 (each 1H, d,
J
= 9.5Hz, H-3, H-4)에서 전형적인 7-hydroxy-6-substituted coumarin의 존재를 확인할 수 있었으며, δ 6.89 (H-8)와 7.17 (H-5)에서 두 개의 amomatic proton이 있음을 알 수 있었다. 또한, 5.29 (1H, t,
J
= 7.2 Hz), 3.36 (2H, d,
J
= 7.2 Hz) 및 1.77, 1.74 (6H, s. gem-(CH
3
)
2
)의 피크에서 3-methylbut-2-enyl 기가 존재함을 확인할 수 있었다. 이는
13
C-NMR 스펙트럼의 하나의 methylene carbon (δ 28.7), 두 개의 olefinic carbon (δ 120.9, 135.4) 및 두 개의 methyl carbon (δ 17.9, 25.8)에서도 확인할 수 있었다. 위의 결과를 바탕으로 화합물
1
은 coumarin 계열의 화합물인 demethylsuberosin로 추정되었으며, 보고된 문헌의 분광학적 data와 비교하여 demethylsuberosin로 최종 확인, 동정하였다(
Fig. 1
).
12)
Structure of compound 1 isolated from Angelica gigas Nakai.
세포독성결과
−화합물
1
의 세포 독성측정과 실험에 사용 될 농도 범위 결정을 위해 NRU assay를 시행하였다. B16F1 melanoma 세포에 대한 세포독성을 측정한 결과, 5 μg/ml 이하의 농도에서 세포생존율이 80% 이상으로 나타났다(
Fig. 2
).
Cell viability of compound 1 isolated from Angelica gigas Nakai on B16F1 melanoma cells by NRU assay. The cells were treated various concentrations of samples. Data represent the mean values of three experiments ±SD. *p<0.01 compared to blank.
멜라닌 생성 억제 효과
−화합물
1
이 멜라닌 합성에 미치는 영향을 확인하기 위하여 B16F1 melanoma 세포를 이용하여 멜라닌 합성 억제 효과를 측정하였다. 화합물
1
을 2.5, 5, 10 μg/ml 농도로 처리한 세포를 수집하여 멜라닌 양을 측정한 결과 농도 의존적으로 멜라닌 합성이 저해됨을 확인하였다(
Fig. 3
). 최고 농도인 5 μg/ml의 농도에서 약 74% 멜라닌 합성이 저해되었고, 양성대조군으로 사용한 arbutin은 500 μg/ml 농도에서 약 33%로 억제되었다.
Inhibition melanin synthesis of compound 1 isolated from Angelica gigas Nakai on B16F1 melanoma cells. Treated cells were lysed with 1N NaOH & 10% DMSO and the absorbance was measured at 405 nm. Data represent the mean values of three experiments ±SD. *p<0.01 compared to the group treated with α-MSH.
Tyrosinase, TRP-1, TRP-2와 MITF의 단백질 발현 저해 효과
−화합물
1
의 멜라닌 합성 억제 효과가 tyrosinase, TRP-1, TRP-2와 같은 멜라닌 합성효소의 발현억제와 멜라닌 형성에 중요한 transcription factor인 MITF의 발현에 관련된 효과인지 알아보기 위해 western blotting을 수행하였다. 그 결과 화합물
1
은 tyrosinase, TRP-1 그리고 TRP-2의 발현을 억제하는 것으로 나타났으며, transcription factor인 MITF의 발현도 농도 의존적으로 억제함을 확인하였다(
Fig. 4
).
The effect of compound 1 isolated from Angelica gigas Nakai on tyrosinase, TRP-1, TRP-2 and MITF protein expression in melanoma cells. The cells were treated with various concentration of compound 1 (5, 2.5, 1.25 μg/ml).
Melanin 생합성 신호전달 체계에는 매우 다양한 신호전달물질이 관여하고 있고 melanin은 몇 가지 세포내 신호전달 기전을 통하여 합성되는데, 그 중 cAMP/PKA 경로가 melanin 합성의 주요 경로로서 UV에 피부가 노출되었을 때 melanin세포의 cAMP가 증가되고 하류 신호전달 물질인 PKA를 활성화 시키며, CREB을 거쳐 MITF의 발현을 증가시킨다. MITF는 melanin 합성 과정에서 중요한 전사 조절인자로 tyrosinase, TRP-1, TRP-2의 전사를 촉진한다. 따라서 실험 결과 화합물
1
은 MITF 발현 억제를 통하여 tyrosinase, TRP-1, 그리고 TRP-2의 단백질 발현이 감소되고, 더 나아가 멜라닌 생성 억제로 이어지는 것이라 판단된다.
결 론
참당귀에서 분리된 coumarin계 화합물은 HPLC, 1D/2DNMR 등의 분광학적 방법으로 demethylsuberosin(
1
)으로 동정하였으며, 이 화합물이 멜라닌 생성에 미치는 영향을 조사하기 위하여 B16F1 melanoma 세포를 이용하여 세포내 멜라닌생성 저해효과, tyrosinase와 관련단백질 및 유전자에 미치는 영향을 연구하였다. 화합물
1
의 B16F1 melanoma 세포를 이용한 멜라닌 생성은 5 μg/ml 농도에서 74% 감소하였고, tyrosinase, TRP-1, TRP-2 및 MITF의 발현도 농도의존적으로 억제하였다. 참당귀 추출물 및 demethylsuberosin은 멜라닌 생합성에 관여하는 단백질과 유전자의 발현조절경로를 통하여 멜라닌 생합성 저해 효과를 나타내는 것으로 보이며 향후 미백제로 응용 할 수 있을 것으로 생각된다.
Konoshima M.
,
Chi H. J.
,
Hata K.
(1968)
Coumarins from the root of Angelica gigas Nakai.
Chem. Pharm. Bull.
16
1139 -
1140
DOI : 10.1248/cpb.16.1139
Kang S. Y.
,
Kim Y. C.
(2007)
Neuroprotective coumarins from the root of Angelica gigas: Structure-activity relationships.
Arch. Pharm. Res.
30
1368 -
1373
DOI : 10.1007/BF02977358
Kang S. A.
,
Han J.A.
,
Jang K.H.
,
Choue R.W.
(2004)
DPPH radical scavenger activity and antioxidant effects of Cham-Dang-Gui (Angilica gigas).
J Korean Soc. Food Sci. Nutr.
33
1112 -
1118
DOI : 10.3746/jkfn.2004.33.7.1112
Son S. H.
,
Kim M. J.
,
Chung W. Y.
,
Son J. A.
,
Kim Y. S.
,
Kim Y. C.
,
Kang S. S.
,
Lee S. K.
,
Park K. K.
(2009)
Decursin and decursinol inhibit VEGF-induced angiogenesis by blocking the activation of extracellular signal-regulated kinase and c-Jun N-terminal kinase.
Cancer Lett.
280
86 -
92
DOI : 10.1016/j.canlet.2009.02.012
Lee S.
,
Shin D. S.
,
Kim J. S.
,
Oh K. B.
,
Kang S. S.
(2003)
Antibacterial coumarins from Angelica gigas roots.
Arch. Pharm. Res.
26
449 -
452
DOI : 10.1007/BF02976860
Han S. B.
,
Kim Y. H.
,
Lee C. W.
,
Park S. M.
,
Lee H. Y.
,
Ahn K. S.
,
Kim I. H.
,
Kim H. M.
(1998)
Characteristic immunostimulation by angelan isolated from Angelica gigas Nakai.
Immunopharmacology
40
39 -
48
DOI : 10.1016/S0162-3109(98)00026-5
Mu H. J.
(2011)
The effects of polydatin isolated from Polygonum cuspidatum on melanogenesis and wrinkle Formation.
J. Soc. Cosmet. Scientists Korea
37
327 -
335
Chen J. S.
,
Wei C.
,
Marxhall M. R.
(1991)
Inhibition mechanism of kojic acid on polyphenol oxidase.
J. Agr. Food Chem.
39
1897 -
1901
DOI : 10.1021/jf00011a001
Urabe K.
,
Aroca P.
,
Tsukamoto K.
,
Mascagna D.
,
Paulumbo A.
,
Prota G.
,
Hering V. J.
(1994)
The inherent cytotoxicty of melanin precursors.
Biochim. Biophys. Acta
1221
272 -
278
DOI : 10.1016/0167-4889(94)90250-X
Masuda T.
,
Takasugi M.
,
Anetai M.
(1998)
Psoralen and other linear furanocoumarins as phytoalexins in Glehnia littoralis.
Phytochemistry
47
13 -
46
DOI : 10.1016/S0031-9422(97)00528-1