Advanced
The Hair Growth Effects of Wheat Bran
The Hair Growth Effects of Wheat Bran
Korean Journal of Pharmacognosy. 2013. Dec, 44(4): 384-390
Copyright © 2013, The Korean Society of Pharmacognosy
  • Received : November 13, 2013
  • Accepted : December 16, 2013
  • Published : December 31, 2013
Download
PDF
e-PUB
PubReader
PPT
Export by style
Article
Author
Metrics
Cited by
TagCloud
About the Authors
정일 강
정선 문
은지 김
영기 이
영상 고
은숙 유
희경 강
pharmkhk@jejunu.ac.kr
동술 임
pharmkhk@jejunu.ac.kr

Abstract
This study was conducted to evaluate the effect of wheat bran on the promotion of hair growth. When rat vibrissa follicles were treated with n -hexane fraction of wheat bran, the hair-fiber lengths of the vibrissa follicles significantly increased. Moreover, n -hexane fraction of wheat bran was found to significantly induce the telogen-anagen transition in C57BL/6 mice. The fraction increased the proliferation of immortalized vibrissa dermal papilla cells (DPCs) in a dose dependent manner. To elucidate the molecular mechanisms in relation to proliferation of DPCs by the fraction of wheat bran, we examined the expression of cell cycle proteins and wnt/β-catenin signaling components. Western blot analysis revealed that the proliferation of DPC by n -hexane fraction of wheat bran was accompanied by increased the level of cyclin D1, cyclin E, phospho-CDK2 and phospho-pRB. In addition, the fraction of wheat bran increased the level of phospho(ser552)-β-catenin, phospho(ser675)-β-catenin and phospho(ser9)-GSK3β. These results suggest that the hair growing potential of wheat bran mediated by proliferation of DPCs via the regulation of cell cycle proteins and Wnt/β-catenin signaling.
Keywords
재료 및 방법
시료 추출 −실험재료인 밀기울(wheat bran)은 경상북도에서 재배된 우리밀의 밀기울을 정미소에서 공급받아 사용하였다. 총 시료 5kg을 90%에탄올에 4시간씩 3회 Water Bath에서 중탕으로 추출하였으며, 상층액을 회수하고 rotary evaporator를 사용하여 감압 농축한 후 조추출물을 337 g 수득하였다. 이중 300 g은 n -hexane을 이용하여 용매 분획하여 n -hexane층 133 g을 얻었고 이 분획물을 실험의 시료로 사용하였다. 밀기울(wheat bran) 시료는 dimethyl sulfoxide(DMSO)로 녹여 실험에 사용하였으며, DMSO의 최종 농도는 0.2%를 초과하지 않도록 하였다.
Rat Vibrissa Follicles의 분리 및 배양 −생후 3주령인 Wistar rat 수컷을(Japan SLC, Hamamatsu, Janpan) ㈜중앙실험동물로부터 구입하여 ethyl ether로 마취 후 경추도살하였다. Rat 왼쪽과 오른쪽 mystacial pads를 분리하여 100 units/ml penicillin-100 μg/ml streptomycin(Gibco Inc, NY, USA)이 함유된 E/P buffer[Earle's balanced salts solution (EBSS, Sigma MO, USA) + phosphate-buffered saline(PBS, Sigma MO, USA)]에 넣었다. 해부 현미경으로 관찰하며 vibrissa follicles을 조심스럽게 분리하였다. 모낭이 모두 분리될 때까지 E/P buffer를 넣은 Petri dish에 분리된 모낭을 넣고 37℃, 5% CO 2 항온기에서 1시간 정도 배양하였다. 24 well plate의 각 well에 2 mM L-glutamine(Gibco Inc, NY, USA), 10 μg/ml insulin(Sigma MO, USA), 50 nM hydrocortisone(Sigma MO, USA)과 100 units/ml penicillin-100 μg/ml streptomycin을 포함하는 500 μl의 William E medium(Gibco Inc, NY, USA)을 넣고, 하나의 well에 하나씩의 모낭을 넣어서 37℃, 5% CO 2 항온기에서 배양하였다. 한 실험군에 8-12개의 모낭을 이용하였으며, 배양 중에 배지는 3 일마다 교환하였다. 밀기울 n -hexane 추출물(1, 10 및 50 μg/ml) 및 양성 대조물질인 minoxidil은 10 μM의 농도로 처리하였다. 21)
Vibrissa Follicles 성장의 측정 −배양중인 vibrissa follicle 형태는 현미경(Olympus, Japan)을 사용하여 촬영하였다. 모낭 길이는 image analyzer(DP controller; Olympus, Japan)를 사용하여 측정하였다. 모낭 길이 변화의 평균값을 구하고 대조군의 평균길이와 비교하여 성장 정도를 측정하였다.
- In Vivo 육모 효능 평가
실험동물 −생후 6주된 암컷 C57BL/6 마우스를 ㈜오리엔트바이오로부터 구입하여 1주간 동물 사육실 환경에 적응시킨 후 실험에 사용하였다. 동물 사육실은 온도 23±3℃, 12시간씩 밤낮을 유지하였다. 실험동물은 격리용 마우스 케이지에서 사육하였고, 실험용 사료를 자유로이 급여하였다. 실험군은 5개의 군으로 설정하여 대조군, 양성 대조군(MINOXYL TM , 현대약품)과 밀기울 n -hexane 추출물(10, 50 및 100 μg/ml) 처리군으로 하였다. 한 실험군에 각 8마리의 마우스를 실험에 이용하였다.
육모 효능 측정 −육모 효과를 살펴보기 위해, 등 쪽 피부의 색이 분홍색인 휴지기 체모의 7주령을 사용하였다. mouse 등 부위를 소동물용 clipper로 털을 완전히 제거하였다. 하루에 한 번씩 시료를 200 μl씩 제모부위에 떨어뜨린 다음에 두드리면서 도포하고 대조군에는 50% 에탄올을 도포하였다. 실험 시작 후 1일, 15일 22일, 29일 및 35일에 털이 자라는 상태를 확인하기 위하여 사진촬영을 실시하였고, 정량적 평가를 위해 dotmatrix planimetry를 수행하였다. 22)
Dermal Papilla Cell 증식 효능 −흰쥐 수염에서 분리된 모낭 유두 세포를 불멸화한 세포(Rat vibrissa immortalized dermal papilla cell) 23) 를 100 units/ml penicillin-100 μg/ml streptomycin(Gibco Inc, NY, USA)과 10% heat-inactivated fetal bovine serum(FBS; Gibco Inc, NY, USA)이 함유된 DMEM(Hyclone Inc, USA) 배지를 사용하여 37℃, 5% CO 2 항온기에서 배양하였으며, 3일에 한 번씩 계대배양 하였다. Rat vibrissa immortalized dermal papilla cell의 증식은 MTT assay를 이용하여 측정하였다. 24) Dermal papilla 세포(1.0×10 4 cells/ml)를 1% FBS를 포함한 DMEM 배지에 혼탁하여 96 well plate에 넣고 24시간 배양 후 밀기울 n -hexane 추출물(0.1, 1, 10 및 50 μg/ml)을 처리하였다. 양성대조군인 minoxidil(Sigma, MO, USA)는 10 μM의 농도로 처리하였다. 4일 동안 배양한 후 50 μl의 MTT(Sigma, MO, USA)을 첨가하고 4시간 동안 반응시켰다. 상층액은 제거하고 DMSO 200 μl을 가하여 침전물을 용해시킨 후 microplate reader(Amersham Pharmacia Biotech, NY, USA)를 사용하여 540 nm에서 흡광도를 측정하였다. 각 시료군에 대한 평균 흡광도 값을 구하였으며, 대조군의 흡광도 값과 비교하여 증식정도를 조사하였다.
Western Blot Analysis − Dermal papilla cell 세포는 1% FBS를 포함하는 DMEM 배지로 24시간 동안 배양한후에 밀기울 n -hexane 추출물(1, 10 및 50 μg/ml) 및 10 μM minoxidil을 처리한 다음 24시간 동안 배양하였다. 세포는 PBS로 2회 세척한 후 200 μl의 lysis buffer[50 mM Tris-HCl(pH 7.5), 150 mM NaCl, 2 mM EDTA, 1 mM EGTA, 1 mM NaVO3, 10 mM NaF, 1 mM dithiothreitol(DTT), 1mM phenylmethylsulfonylfluoride(PMSF), 25 μg/mL aprotinin, 25 μg/mL leupeptin and 1% NP-40]를 첨가한 다음, 4℃에서 30분 동안 lysis 시켰다. Cell lysate는 15,000 rpm 에서 15분 동안 원심분리하여 상층액을 얻었고 실험에 사용전까지 -20℃에 보관하였다. 단백질 농도는 BSA(bovine serum albumin)를 표준물질로 사용하여 Bradford method에 의하여 정량하였다. 25) 20-30 μg의 lysate를 8-12% mini gel SDS-PAGE(Sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis)로 변성분리하여 PVDF(polyvinylidene fluoride) membranes(Bio-Rad, Hercules, CA, USA)으로 200 mA에서 2시간 동안 transfer하였다. 그리고 membrane의 blocking은 5% nonfat dried milk가 함유된 Tween-20-TBS(T-TBS)(50 mM Tris, pH 7.6, 150 mM NaCl, 0.1% Tween-20) 용액에서 2시간 동안 실시하였다. Membrane은 여러 단백질의 발현을 조사하기 위해 Cyclin D1(1:1000), phospho-CDK2(1:1000), Cyclin E(1:2000), phospho(ser780)-pRB(1:1000), phospho-ERK1/2(1:1000), ERK1/2(1:1000), phospho(ser552)-β-catenin (1:1000), phospho(ser675)-β-catenin(1:1000), β-catenin(1:2000), phospho(ser9)-GSK3β(1:1000), GSK3β(1:1000) and β-actin(1:5000)에 대한 primary antibody로 4℃에서 overnight 실시하였다. Secondary anbibody는 HRP(Horse Radish Peroxidase)가 결합된 anti-rabbit IgG, anti-mouse IgG를 1:5000으로 희석하여 1시간 동안 상온에서 진행하였다. 그 다음 T-TBS로 membane을 3회 세척한 후, ECL 기질(Intron, Seoul, Korea)로 1분 동안 반응시킨 다음 X-ray film(AGFA, Mortsel, Belgium)에 감광하였다.
통계분석 −모든 측정결과는 평균±표준편차 또는 표준오차로 나타내었으며, 통계학적 유의성 검정은 student's t-test으로 검정하였으며, p -value가 0.05이하일 경우 유의성을 인정하였다. 통계처리는 SPSS 12.0K for Windows(Release 12.0.1. SPSS Inc. USA)를 사용하였다.
결과 및 고찰
밀기울 n -hexane 추출물이 육모 효능이 있는지 조사하기 위하여 rat vibrissa follicle culture model을 이용하였다. Rat vibrissa follicles은 나이에 따라 모발주기가 동일하며, 분리된 vibrissa follicles은 in vitro 에서 23일 정도까지 배양이 가능하다. 26 , 27) 생후 3 주령 rat의 성장기 vibrissa follicles을 분리하여 3주간 배양하면서 모낭 길이를 측정하여 밀기울 n -hexane 추출물이 육모 효능 있는지 조사하였다. 21일째 밀기울 n -hexane 추출물 처리군과 대조군과의 모낭의 길이 차이 (%)를 비교한 결과, 1, 10 및 50 μg/ml을 각각 처리하였을 때 대조군(100.0±18.5%)보다 hair fiber의 성장이 150.0±21.7%( P<0.001 ), 203.6±7.6%( P<0.001 ) 및 246.4±19.8%( P<0.001 )로 증가하였으며, 양성대조군인 10 μM minoxidil은 156.3±11.5%( P<0.05 ) 성장을 나타내었다( Fig. 1 ). 이러한 밀기울 n -hexane 추출물을 처리하였을 때의 hair-fiber 길이 성장 효능은 양성대조군인 minoxidil의 hair-fiber 길이 성장 효능보다 더 큰 것이다.
PPT Slide
Lager Image
The effects of n-hexane fraction of wheat bran on the promotion of hair-growth. Vibrissa follicles were treated with n-hexane fraction of wheat bran (1, 10 and 50 μg/ml) for 21 days Stimulation with minoxidil served as a positive control. The difference in the length of vibrissa follicles of the control group on day 21 was considered to be 100%. Data are expressed as the mean ± SE. *p<0.05 vs. control.
밀기울 n -hexane 추출물에 의한 in vitro 육모 효과가 실제 in vivo 동물모델에서도 나타나는지 C57BL/6 마우스를 사용하여 평가하였다. C57BL/6 마우스는 피부의 melanocyte가 모낭에만 존재하며, 모발 주기가 휴지기(telogen)에서 성장기(anagen)로 진행이 되면 피부색깔이 핑크색에서 검은색으로 변하는 것을 확인할 수 있다. 28) Fig. 2 에서 보이는 것처럼 밀기울 n -hexane 추출물 도포군에서 제모 후 22일부터 피부색의 변화가 관찰되었고, 제모 후 29일 및 35일째에 밀기울 n -hexane 추출물 도포군은 피부색의 변화 및 모발의 성장을 확인할 수 있었다. 밀기울 n -hexane 추출물 도포군의 모발의 성장기 유도 효능을 dotmatrix 면적측정법 22) 을 이용하여 정량적으로 분석한 결과, 35일째에 50 μg/ml의 농도에서 밀기울 n -hexane 추출물 도포군은 대조군에 비해 유의하게 높은 성장기 유도 효능을 나타냄을 확인하였다( Fig. 2 ). MINOXYL TM 도포군은 제모 후 15일 이후부터 피부색상의 변화 및 뚜렷한 모발 성장 효과를 확인 할 수 있었다( Fig. 2 ). 이러한 결과는 밀기울 n -hexane 추출물이 in vivo 에서 모발의 성장기를 유도할 수 있음을 시사한다.
PPT Slide
Lager Image
The effects of n-hexane fraction of wheat bran on the anagen induction in C57BL/6 mice. After shaving, the back skins were treated with n-hexane fraction of wheat bran, vehicle and MINOXYLTM every day for 35 days. (A) The back skins were photographed at 1, 15, 22, 29 and 35 days after depilation. (B) On day 35, to analyze the quantitative assessment of anagen induction, dotmatrix planimetry was performed. The transparency was put on a photo of a mouse to mark the areas that were in different stages (pink = telogen, anagen = black). Afterward a dotmatrix (sheet with a uniform defined dot pattern) was placed under the marked foil to calculate the percentages of the regions of interest by counting the dots. The percentage of anagen induction was calculated by the equation [(black skin/total skin) × 100]. Data are presented as the mean ± S.E. (n = 8). *p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001 vs. vehicle treated control.
한편, type II 5α-reductase는 testosterone이 dihydrotestosterone으로 전환되는데 관여하는 효소로서 탈모의 주요 원인으로 알려져 있다. 29) 따라서 밀기울 n -hexane 추출물이 5α-reductase 활성을 억제하는지 rat prostatic enzyme fraction을 이용하여 조사하였다. 30) 하지만 밀기울 n -hexane 추출물은 5α-reductase 활성 억제 효능을 나타내지 않았다(data not shown).
PPT Slide
Lager Image
The effects of n-hexane fraction of wheat bran on cultured dermal papilla cells. Rat dermal papilla cells (1.0×104 cells/ml) were plated in 96 well plates. Dermal papilla cells were treated with n-hexane fraction of wheat bran (0.1, 1, 10 and 50 μg/ml). Stimulation with minoxidil served as a positive control. Cell proliferation was measured using a MTT assay for 4 days. All experiments were performed in triplicate. Data are presented as the mean ± the S.D. * p<0.05, ** p<0.01, *** p<0.001 vs. vehicle treated control.
밀기울이 모유두 세포의 성장증식 효능이 있는지 불멸화된 모유두 세포를 사용하여 조사하였다. 모유두 세포는 모낭의 기저에 위치하는 중배엽 유래 세포로써, 상피세포로 이루어진 모기질 세포(matrix cells)와의 상호작용을 통해 모발의 형성 및 성장에 중요한 요소로 작용한다고 알려져 있다. 31 , 32) 밀기울 n -hexane 추출물을 0.1, 1, 10 및 50 μg/ml 농도로 처리하였을 때, 대조군에 비하여 각각 119.0±13.0%( P<0.001 ), 125.1±11.1%( P<0.001 ), 162.2±16.8%( P<0.001 ) 및 242.7±40.5%( P<0.001 ) 정도 모유두 세포의 증식이 농도 의존적으로 증가하였다. 실험된 모든 농도에서 밀기울 n -hexane 추출물의 모유두 세포의 증식 효과는 양성대조물질로 사용한 10 μM minoxidil의 118.±4.3%( P<0.01 ) 증식 증가 효과보다 높았다( Fig. 3 ). 이러한 결과를 통하여 밀기울 n -hexane 추출물이 모유두 세포의 증식을 통해 육모 효능을 나타낼 수 있음을 확인하였다.
밀기울 hexane 추출물이 모유두 세포의 성장증식을 증가시키는 분자적 기전을 밝히기 위해 cell cycle 단백질의 발현을 관찰하였다. 포유류 세포는 세포증식의 주요 과정인 cell cycle 진행을 위해 cyclin E/CDK2 complex의 활성화, cyclin D1 증가 및 pRB의 인산화 증가 등을 필요로 함이 알려져 있다. 33 - 35) Minoxidil은 모유두 세포에서 cyclin E 및 CDK2의 level 증가, p27 kip1 level 감소를 통해 cell cycle 진행을 촉진하고 모유두 세포의 증식을 유도하는 것으로 알려져 있다. 30) 밀기울 n -hexane 추출물의 모유두 세포증식 증가 효과가 cell cycle proteins에 의해 조절되는지 확인하기 위해, cyclin D1, cyclin E, phospho-CDK2, phospho-pRB의 발현을 조사하였다. 그 결과, Fig. 4 A에서 보는 바와 같이, 밀기울 n -hexane 추출물을 모유두 세포에 24시간 동안 1, 10 및 50 μg/ml 농도로 처리하였을 때, cyclin D1, cyclin E, phospho-CDK2 및 phospho-pRB의 발현이 증가함을 확인할 수 있었고, minoxidil의 처리 역시 밀기울 n -hexane 추출물과 비슷한 결과를 보임을 확인하였다( Fig. 4 A) 한편, Wnt/β-catenin 신호전달 경로는 모발성장, 세포증식 조절에서 중요한 역할을 한다. 14 , 36) Wnt/β-catenin 신호전달 경로는 다양한 인자에 의해 조절되며 특히, Akt의 활성화는 β-catenin의 인산화(ser552) 및 GSK3β의 인산화(ser9)를 유도하며, PKA는 β-catenin의 인산화(ser552 및 ser675)를 유도하여 결국 Wnt/β-catenin 신호전달 경로를 활성화 하게 된다. 18 - 20 , 37) 그 이후에 β-catenin의 안정화 및 세포핵으로의 이동 촉진 등의 과정이 일어나 target gene의 발현을 조절하게 된다. 18 , 20) 본 실험 결과를 보면 밀기율 n -hexane 추출물 처리에서는 Phospho(ser552)-β-catenin, Phospho(ser675)-β-catenin, Phospho(ser9)-GSK3β의 활성화가 증가함을 확인하였고, minoxidil의 처리는 Wnt/β-catenin 경로를 다소 활성화시킴을 관찰하였다( Fig. 4 B). Lee 등은 minoxidil이 human DPCs 및 C3H mouse에서 β-catenin level에 영향을 미치지 않음을 보고한 반면 38) Kwack 등은 minoxidil이 human DPCs에서 PKA, Akt 및 GSK3β의 활성화를 경유한 β-catenin 신호전달 경로의 조절을 통해 육모 효능을 나타냄을 보고하고 있다. 14) 이러한 결과들은 밀기울 n -hexane 추출물이 cyclin D1, cyclin E, phospho-CDK2, phospho-pRB 같은 cell cycle 단백질뿐만 아니라 GSK3β, PKA및 Akt 경로를 통한 Wnt/β-catenin 신호전달 경로의 활성화에 의해 모유두 세포의 증식증가 효능을 나타냄을 시사한다.
PPT Slide
Lager Image
The effects of n-hexane fraction of wheat bran on the level of cell cycle associated proteins and the Wnt/β-catenin signaling proteins in cultured dermal papilla cells. Immortalized DPCs (1.0 × 105 cells/ml in 100 mm dishes) were pre-incubated for 24 h under 1% serum conditions, the cells were treated with n-hexane fraction of wheat bran (1, 10 and 50 μg/ml) and minoxidil (10 μM) for 24 h. Whole cell lysates from DPCs were analyzed for (A) the levels of cyclin D1, cyclin E, phospho-CDK2, CDK2 and phospho-pRB as well as (B) the levels of phospho(ser552)-β-catenin, phospho(ser675)-β-catenin, β-catenin, phospho(ser9)-GSK3β and GSK3β by western blot.
결 론
본 연구에서는 밀기울 n -hexane 추출물이 모발의 성장에서 중요한 역할을 하는 모유두 세포에서 cell cycle proteins, Wnt/β-catenin 신호전달 경로의 활성화에 의한 세포의 성장증식을 촉진 효과를 통해 모낭의 성장기를 유도하거나 성장기를 유지시킴을 밝혔다. 이와 같은 연구결과는 밀기울 n -hexane 추출물이 탈모치료 및 예방제로 이용될 수 있는 가능성을 가지고 있다는 근거를 제시하는 것이다.
Acknowledgements
이 논문은 2013학년도 제주대학교 학술진흥연구비 지원사업에 의하여 연구되었음.
References
Shewry P. (2009) The Healthgrain programme opens new opportunities for improving wheat for nutrition and health. Nutr. Bull. 34 225 - 231    DOI : 10.1111/j.1467-3010.2009.01747.x
Stevenson L. , Phillips F. , O’Sullivan K. , Walton J. (2012) Wheat bran: its composition and benefits to health, a European perspective. Int. J. Food Sci. Nutr. 63 1001 - 1013    DOI : 10.3109/09637486.2012.687366
Yu L. , Haley S. , Perret J. , Harris M. , Wilson J. , Qian M. (2002) Free radical scavenging properties of wheat extracts. J. Agric. Food Chem. 50 1619 - 1624    DOI : 10.1021/jf010964p
Kim K. H. , Tsao R. , Yang R. , Cui S. W. (2006) Phenolic acid profiles and antioxidant activities of wheat bran extracts and the effect of hydrolysis conditions. Food Chem. 95 466 - 473    DOI : 10.1016/j.foodchem.2005.01.032
Shan Y. , Cheng Y. , Zhang Y. , Guan F. Q. , Sun H. , Ren X. C. , Chen Y. , Feng X. , Yang J. M. (2013) Triticuside a, a dietary flavonoid, inhibits proliferation of human breast cancer cells via inducing apoptosis. Nutr. Cancer 65 891 - 899    DOI : 10.1080/01635581.2013.802001
Price V. H. (1999) Treatment of hair loss. N. Engl. J. Med. 341 964 - 973    DOI : 10.1056/NEJM199909233411307
Ellis J. A. , Sinclair R. , Harrap S. B. (2002) Androgenetic alopecia: pathogenesis and potential for therapy. Expert. Rev. Mol. Med. 4 1 - 11    DOI : 10.1017/S1462399402005112
Cotsarelis G. , Millar S. E. (2001) Towards a molecular understanding of hair loss and its treatment. Trends Mol. Med. 7 293 - 301    DOI : 10.1016/S1471-4914(01)02027-5
Kaufman K. D. , Dawber R. P. (1999) Finasteride, a Type 2 5alpha-reductase inhibitor, in the treatment of men with androgenetic alopecia. Expert. Opin. Investig. Drugs. 8 403 - 415    DOI : 10.1517/13543784.8.4.403
Kaufman K. D. (2002) Androgens and alopecia. Mol. Cell Endocrinol. 198 89 - 95    DOI : 10.1016/S0303-7207(02)00372-6
Hamaoka H. , Minakuchi K. , Miyoshi H. , Arase S. , Chen C. H. , Nakaya Y. (1997) Effect of K+channel openers on K+channel in cultured human dermal papilla cells. J. Med. Invest. 44 73 - 77
Shorter K. , Farjo N. P. , Picksley S. M. , Randall V. A. (2008) Human hair follicles contain two forms of ATP-sensitive potassium channels, only one of which is sensitive to minoxidil. FASEB J. 22 1725 - 1736    DOI : 10.1096/fj.07-099424
Lachgar S. , Charveron M. , Gall Y. , Bonafe J. L. (1998) Minoxidil upregulates the expression of vascular endothelial growth factor in human hair dermal papilla cells. Br. J. Dermatol. 138 407 - 411    DOI : 10.1046/j.1365-2133.1998.02115.x
Kwack M. H. , Kang B. M. , Kim M. K. , Kim J. C. , Sung Y. K. (2011) Minoxidil activates beta-catenin pathway in human dermal papilla cells: A possible explanation for its anagen prolongation effect. J. Dermatol. Sci. 62 154 - 159    DOI : 10.1016/j.jdermsci.2011.01.013
Han J. H. , Kwon O. S. , Chung J. H. , Cho K. H. , Eun H. C. , Kim K. H. (2004) Effect of minoxodil on proliferation and apoptosis in dermal papilla cells of human hair follicle. J. Dermatol. Sci. 34 91 - 98    DOI : 10.1016/j.jdermsci.2004.01.002
Johnson D. G. , Walker C. L. (1999) Cyclins and cell cycle checkpoints. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 39 295 - 312    DOI : 10.1146/annurev.pharmtox.39.1.295
Tetsu O. , McCormick F. (1999) Beta-catenin regulates expression of cyclin D1 in colon carcinoma cells. Nature 398 422 - 426    DOI : 10.1038/18884
Hedgepeth C. M. , Conrad L. J. , Zhang J. , Huang H. C. , Lee V. M , Klein P. S. (1997) Activation of the Wnt signaling pathway: a molecular mechanism for lithium action. Dev. Biol. 185 82 - 91    DOI : 10.1006/dbio.1997.8552
Hino S. , Tanji C. , Nakayama K. I. , Kikuchi A. (2005) Phosphorylation of beta-catenin by cyclic AMP-dependent protein kinase stabilizes beta-catenin through inhibition of its ubiquitination. Mol. Cell. Biol. 25 9063 - 9072    DOI : 10.1128/MCB.25.20.9063-9072.2005
Monick M. M. , Carter A. B. , Robeff P. K. , Flaherty D. M. , Peterson M. W. , Hunninghake G. W. (2001) Lipopolysaccharide activates Akt in human alveolar macrophages resulting in nuclear accumulation and transcriptional activity of beta-catenin. J. Immunol. 166 4713 - 4720    DOI : 10.4049/jimmunol.166.7.4713
Matsuda H. , Yamazaki M. , Asanuma Y. , Kubo M. (2003) Promotion of Hair Growth by Ginseng Radix on Cultured Mouse Vibrissal Hair Follicles. Phytother. Res. 17 797 - 800    DOI : 10.1002/ptr.1241
Ohnemus U. , Uenalan M. , Conrad F. , Handjiski B. , Mecklenburg L. , Nakamura M. , Inzunza J. , Gustafsson J.A. , Paus R. (2005) Hair cycle control by estrogens: Catagen induction via estrogen receptor (ER)-alpha is checked by ER beta signaling. Endocrinology 146 1214 - 1225    DOI : 10.1210/en.2004-1219
Filsell W. , Little J. C. , Stones A. J. , Granger S. P. , Bayley S. A. (1994) Transfection of rat dermal papilla cells with a gene encoding a temperature-sensitive polyomavirus large T antigen generates cell lines a differentiated phenotype. J. Cell Sci. 107 1761 - 1772
Carmichael J. , DeGraff W. G. , Gazdar A. F. , Minna J. D. , Mitchell J. B. (1987) Evaluation of a tetrazolium-based semiautomated colorimetric assay: assessment of chemosensitivity testing. Cancer Res. 47 936 - 942
Bradford M.M. (1976) A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72 248 - 254    DOI : 10.1016/0003-2697(76)90527-3
Philpott M. P. , Green M. R. , Kealy T. (1992) Rat hair follicle growth in vitro. Br. J. Dermatol. 127 600 - 607    DOI : 10.1111/j.1365-2133.1992.tb14873.x
Philpott M. P. , Kealey T. (2000) Cyclical changes in rat vibrissa follicles maintained in vitro. J. Invest. Dermatol. 115 1152 - 1155    DOI : 10.1046/j.1523-1747.2000.00183.x
Müller-Röver S. , Handjiski B. , van der Veen C. , Eichmüller S. , Foitzik K. , McKay I. A. , Stenn K. S. , Paus R. (2001) A comprehensive guide for the accurate classification of murine hair follicles in distinct hair cycle stages. J. Invest. Dermatol. 117 3 - 15    DOI : 10.1046/j.0022-202x.2001.01377.x
Kaufman K. D. , Olsen E. A. , Whiting D. , Savin R. , DeVillez R. , Bergfeld W. , Price V. H. , van Neste D. , Roberts J. L. , Hordinsky M. , Shapiro J. , Binkowitz B. , Gormley GJ. (1998) Finasteride in the treatment of men with androgenetic alopecia. J. Am. Acad. Dermatol. 39 578 - 589    DOI : 10.1016/S0190-9622(98)70007-6
Kang J. I. , Kim E. J. , Kim M. K. , Jeon Y. J. , Kang S. M. , Koh Y. S. , Yoo E. S. , Kang H.K. (2013) The promoting effect of Ishige sinicola on hair growth. Mar. Drugs 11 1783 - 1799    DOI : 10.3390/md11061783
Jahoda C. A. , Horne K. A. , Oliver R. F. (1984) Induction of hair growth by implantation of cultured dermal papilla cells. Nature 311 560 - 562    DOI : 10.1038/311560a0
Horne K. A. , Jahoda C. A. , Oliver R. F. (1986) Whisker growth induced by implantation of cultured vibrissa dermal papilla cells in the adult rat. J. Embryol. Exp. Morphol. 97 111 - 124
Sherr C. J. (1996) Cancer cell cycles. Science 274 1672 - 1677    DOI : 10.1126/science.274.5293.1672
Sherr C. J. , Roberts J. M. (1999) CDK inhibitors: Positive and negative regulators of G1-phase progression. Genes Dev. 13 1501 - 1512    DOI : 10.1101/gad.13.12.1501
Prall O. W. , Sarcevic B. , Musgrove E. A. , Watts C. K. , Sutherland R. L. (1997) Estrogen-induced activation of Cdk4 and Cdk2 during G1-S phase progression is accompanied by increased cyclin D1 expression and decreased cyclin-dependent kinase inhibitor association with cyclin E-Cdk2. J. Biol. Chem. 272 10882 - 10894    DOI : 10.1074/jbc.272.16.10882
Wangefjord S. , Brändstedt J. , Ericson Lindquist K. , Nodin B. , Jirström K. , Eberhard J. (2013) Associations of betacatenin alterations and MSI screening status with expression of key cell cycle regulating proteins and survival from colorectal cancer. Diagn. Pathol. 8 10 -    DOI : 10.1186/1746-1596-8-10
Brudvik K. W. , Paulsen J. E. , Aandahl E. M. , Roald B. , Taskén K. (2011) Protein kinase A antagonist inhibits β-catenin nuclear translocation, c-Myc and COX-2 expression and tumor promotion in Apc(Min/+) mice. Mol. Cancer. 10 149 -    DOI : 10.1186/1476-4598-10-149
Lee S. H. , Yoon J. , Shin S. H. , Zahoor M. , Kim H. J. , Park P. J. , Park W. S. , Min do. S. , Kim H. Y. , Choi K. Y. (2012) Valproic acid induces hair regeneration in murine model and activates alkaline phosphatase activity in human dermal papilla cells. PLoS One. 7 e34152 -    DOI : 10.1371/journal.pone.0034152