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Effect of Coptidis Rhizoma Extract on Cytokine Production of Mouse Macrophages
Effect of Coptidis Rhizoma Extract on Cytokine Production of Mouse Macrophages
Herbal Formula Science. 2013. Dec, 21(2): 81-89
Copyright © 2013, The Korean Academy of Oriental Medicine prescription
This paper is available at http//:www.ompak.okdanche.com which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.
  • Received : October 28, 2013
  • Accepted : November 15, 2013
  • Published : December 30, 2013
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복기 김
효상 한
영종 이
garak@gachon.ac.kr

Abstract
Objectives :
The purpose of this study is to observe the effect of Coptidis Rhizoma (CCE-extract of C. chinensis Rhizome) in induction of immune protein on mouse macrophages.
Methods :
To analyze cytokines interleukin(IL)-1α, IL-3, IL-9, IL-12p40, IL-13, IL-17, Monocyte Chemoattractant Protein(MCP)-1 induced by macrophages, mouse macrophages were incubated with CCE and was measured.
Results :
IL-1α measurement, CCE showed significant inhibition only at concentration level of 200 ㎍/mL. IL-3, MCP-1 measurement, CCE showed significant inhibition only at concentration level of 100, 200 ㎍/mL. IL-9 measurement, CCE showed significant inhibition only at concentration level of 50 ㎍/mL. IL-13 measurement, CCE showed significant inhibition only at concentration level of 50, 100, 200 ㎍/mL. The IL-12p40, IL-17 levels indicated no changes at 25, 50, 100, 200 ㎍/mL on mouse macrophages.
Conclusions :
CCE did not significantly increased inflammatory cytokines IL-1α, IL-3, IL-9, IL-12p40, IL-13, IL-17, Monocyte Chemoattractant Protein(MCP)-1 on mouse macrophages. It was verified CCE does not trigger cytokine related hypersensitivity reaction of organism or exacerbation of acute/chronic inflammatory disease.
Keywords
Ⅰ. 서 론
黃連은 미나리아재비과(Ranunculaceae)에 속한 多年生 草本인 황련 Coptis japonica Makino, 중국황련(中國黃連) Coptis chinensis Franchet, 삼각엽황련(三角葉黃連) Coptis deltoidea C. Y. Cheng et Hsiao 또는 운련(雲連) Coptis teeta Wallich의 뿌리줄기로서 1) , 가을에 채취하여 鬚根과 泥沙를 제거하고 건조한다 2) .
黃連은『神農本草經』 3) 에 “ 黃連, 味苦寒. 主熱氣, 目痛, 眦傷, 泣出, 明目, 腸澼, 腹痛, 下痢, 婦人陰中腫痛. 久服, 令人不忘. 一名王蓮. 生川谷.” 이라고 처음 기록된 이래 한의학 임상에서 淸熱瀉火, 燥濕, 解毒의 효능 4) 으로 상용되고 있다.
황련의 주성분으로는 알칼로이드인 berberine이 7~9%를 차지하고 5) , palmatine, coptisine, jateorrhizine, worenine, magnoflorine 등을 함유하며 산성물질로 ferulic acid가 함유되어있다 6) .
약리작용으로는 항염작용 7) , 항균작용 8) , 항바이러스작용 9) , 항위궤양 10) , 항암작용 11) 등이 보고되었다.
대식세포는 사이토카인(cytokine) 등의 면역단백질을 생성·이용하여 외부로부터 침입한 항원을 직접 공격하거나, 혹은 T세포 활성 등에 필요한 정보를 제시하기도 하며, 인체 내의 불필요한 세포들을 제거하는 등의 기능을 통하여 선천성 면역반응과 염증반응에 있어서 중요한 역할을 한다 12,13) . 그러나 과도하거나 조절되지 못한 염증성 면역단백질들(inflammatory cytokines)의 생성은 미세순환장애, 조직손상, 패혈증 등의 심각한 전신적 부작용을 유발하며 때로는 생명을 위협할 수도 있다 14,15) .
黃連의 항염 작용에 관한 선행논문으로는 이 등 16) 은 황련추출물의 항염효과를 보고 하였고, 정 등 17) 과 조 등 18) 은 LPS에 의해 유발된 황련 열수추출물의 염증 면역 활성효과를 보고하였다.
이처럼 黃連은 淸熱瀉火, 燥濕, 解毒 4) 의 효능과 관련된 항염증활성에 관한 보고가 많이 되었는데, 본 논문에서는 黃連 열수추출물이 마우스 대식세포가 생성한 사이토카인(cytokine)과 케모카인(chemokine)들의 생성량의 변화를 조사하여 黃連의 항염효과를 알아 보고자 하였다.
이에 저자는 黃連을 열수추출하여 얻은 시료 CCE (Extract of C. chinensis Rhizome)와 함께 마우스 대식세포를 배양한 후 마우스 대식세포가 생성, 배출하는 interleukin(IL)-1α, IL-3, IL-9, IL-12p40, IL-13, IL-17, monocyte chemoattractant protein (MCP)-1 등의 사이토카인의 양을 측정하여, 유의한 결과를 얻었기에 보고하는 바이다.
Ⅱ. 재료 및 방법
- 1. 재 료
- 1) 약재
실험에 사용된 黃連(Coptidis Rhizoma)은 중국산 중국황련(中國黃連, Rhizome of C. chinensis Franchet)을 2008년 2월에 구입하여 약재의 기원 약전의 성상 항에 따라 경원대학교 한의과대학 본초학교실에서 감정하였으며(NO. 2008-02 -0012), 모든 약재는 사용 전에 초음파 세척기 (Branson, USA)를 이용하여 불순물을 제거하였다.
- 2) Cell line
실험에 사용된 대식세포는 마우스 복강 대식세포 (mouse macrophage line)인 Raw 264.7 세포로서 한국세포주은행(KCLB, Korea)으로부터 구입하여 사용하였다.
- 3) 시약 및 기기
본 실험을 위해서 ethyl alcohol(Samchun Chemical, Korea), methyl alcohol(Samchun Chemical, Korea), DMSO(Sigma, USA), DMEM(Sigma, USA), 1×PBS (Sigma, USA), dihydrorhodamine 123(Sigma, USA), EDTA(Sigma, USA), acetic acid(Sigma, USA), isopropanol( Sigma, USA), Trypsin-EDTA(Sigma, USA), sulfanilamide(Sigma, USA), H 2 SO 4 (Sigma, USA), potassium phosphate(Sigma, USA), NO assay kit (Oxford Biomedical Research, USA), Bio- Plex cytokine assay kit(Panomics, USA) 등이 사용 되었다. 각 시약의 품질은 분석용 등급 이상의 것으 로 하여 사용하였다. 본 실험에 사용된 기기는 CO 2 incuvator (NUAIRE, USA), pulverizer(Rong tsong, Taiwan), rotary vacuum evaporator(Eyela, Japan), air compressor(Tamiya, Japan), homogenizer(Omni, USA), research microscope(Becton dickinson, USA), centrifuge(Hanil, Korea), fume hood(Hanil, Korea), clean bench(Jeio thec, Korea), ultrasonic cleaner (Branson, USA), microplate reader (Bio-Rad, USA), thermo aluminum bath(Fine PCR, USA), vortex mixer(Vision Scientific Co, Korea), water bath(iNtRON biotech., Korea), ice-maker(Vision Scientific Co, Korea) 등이다.
- 2. 방 법
- 1) 시료의 제조
黃連 50 g을 정확하게 중량을 측정한 뒤 환류추출기에 1 차 증류수 2,000 mL와 함께 넣은 뒤 탕액이 끓는 시점으로부터 2 시간 동안 가열하여 추출한 다음 추출액을 filter paper (Advantec No.2, Japan)로 감압 여과한 여과액을 rotary vacuum evaporator를 이용하여 농축액을 얻었다. 이 농축액을 동결건조기를 이용하여 건조한 분말(CCE)을 시료로 사용하였다. 동결건조 추출물은 12.6 g을 얻었으며, 수율은 25.2% 이였다.
- 2) 세포 배양
Raw 264.7 세포는 37℃, 5% CO 2 조건에서 10% FBS, penicillin(100 U/mL), streptomycin(100 ㎍/mL)이 첨가된 DMEM 배지로 배양되었다. Raw 264.7 세포 를 75 cm 2 flask (Falcon, USA)에서 충분히 증식된 후 배양 3 일 간격으로 배양세포 표면을 phosphate buffered saline(PBS) 용액으로 씻어준 후 50 mL flask 당 1 mL의 0.25% trypsin-EDTA용액을 넣고 실온에서 1 분간 처리한 다음 trypsin 용액을 버리고 37℃에서 5 분간 보관하여 세포를 탈착하여 계대 배양하였다. 탈착된 세포는 10% FBS가 첨가된 DMEM 배양액 10 mL에 부유시킨 다음 새로운 배양용기(50 mL culture flask)에 옮겨 1 : 2 의 split ratio로 CO 2 배양기(37℃, 5% CO 2 )에서 배양하였다.
- 3) 사이토카인(cytokine) 분비 측정
사이토카인 분비와 관련된 시료의 영향을 알아보기 위해 Politch 등 19) 의 방법을 응용하여 Bio-Plex Cytokine Assay를 다음과 같이 시행하였다. 96 well plate에 1×10 5 cells/mL의 세포를 100 ㎕씩 넣고 37℃, 5% CO 2 i ncubator에서 24 시간 동안 배양한 후배지를 버리고 배양세포 표면을 1×PBS 용액으로 씻어준 뒤 각 well에 다양한 농도의 시료(25, 50, 100, 200 ㎍/mL)와 함께 배지에 담아 처리하고 24 시간 동안 배양하였다. 배양이 끝나면 상등액을 채취하여 Bio-Plex Suspension Array System을 이용, Quantitative Multiplexed Cytokine/Chemokine Assay 20) 를 실시하여 각종의 싸이토카인류(IL-1α, IL-3, IL-9, IL-12p40, IL-13, IL-17, MCP-1)의 발현에 대한 시료의 영향을 계산, 비교하였다.
- 3. 통계처리
본 실험에서 얻은 결과에 대해서는 mean ± SEM 로 나타내었으며, 대조군과 각 실험군과의 평균의 차이는 Student's t-test로 분석하여 p -value 값이 0.05 미만일 때 통계적으로 유의한 차이가 있는 것으로 판정하였다.
Ⅲ. 결 과
- 1. IL-1α 생성에 대한 효과
CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-1α의 생성에 미치는 영향을 조사하였다. CCE를 24 시간동안 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도로 처리한 결과 200 ㎍/mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 나머지 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다 ( Fig. 1 ).
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Effect of CCE on IL-1α production of Raw 264.7 cells. Cells were incubated for 24 hrs. Results are represented as mean ± SEM of the three independent experiments.CCE : Water extract of Coptis Rhizome.Normal : Not treated with CCE.* represents P < 0.05 compared to the normal.
- 2. IL-3 생성에 대한 효과
CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-3의 생성에 미치는 영향을 조사하였다. CCE를 24 시간동안 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도로 처리한 결과 100 ㎍/mL, 200 ㎍/mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 나머지 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다( Fig. 2 ).
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Effect of CCE on IL-3 production of Raw 264.7 cells. Cells were incubated for 24 hrs. Results are represented as mean ± SEM of the three independent experiments.CCE : Water extract of Coptis Rhizome.Normal : Not treated with CCE.* represents P < 0.05 compared to the normal.
- 3. IL-9 생성에 대한 효과
CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-9의 생성에 미치는 영향을 조사하였다. CCE를 24 시간동안 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도로 처리한 결과 25 ㎍/mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 나머지 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다( Fig. 3 ).
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Effect of CCE on IL-9 production of Raw 264.7 cells. Cells were incubated for 24 hrs. Results are represented as mean ± SEM of the three independent experiments.CCE : Water extract of Coptis Rhizome.Normal : Not treated with CCE.* represents P < 0.05 compared to the normal.
- 4. IL-12p40 생성에 대한 효과
CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-12p40의 생성에 미치는 영향을 조사하였다. CCE를 24 시간 동안 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도로 처리한 결과 모든 농도에서 유의한 감소가 나타나지 않았다( Fig. 4 ).
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Effect of CCE on IL-12p40 production of Raw 264.7 cells. Cells were incubated for 24 hrs. Results are represented as mean ± SEM of the three independent experiments.CCE : Water extract of Coptis Rhizome.Normal : Not treated with CCE.
- 5. IL-13 생성에 대한 효과
CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-13의 생성에 미치는 영향을 조사하였다. CCE를 24 시간동안 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도로 처리한 결과 50 ㎍/mL, 100 ㎍/mL, 200 ㎍/mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 25 ㎍/mL 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다( Fig. 5 ).
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Effect of CCE on IL-13 production of Raw 264.7 cells. Cells were incubated for 24 hrs. Results are represented as mean ± SEM of the three independent experiments.CCE : Water extract of Coptis Rhizome.Normal : Not treated with CCE.* represents P < 0.05 compared to the normal.
- 6. IL-17 생성에 대한 효과
CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-17의 생성에 미치는 영향을 조사하였다. CCE를 24 시간 동안 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도로 처리한 결과 모든 농도에서 유의한 변화가 나타나지 않았다( Fig. 6 ).
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Effect of CCE on IL-17 production of Raw 264.7 cells. Cells were incubated for 24 hrs. Results are represented as mean ± SEM of the three independent experiments.CCE : Water extract of Coptis Rhizome.Normal : Not treated with CCE.
- 7. MCP-1 생성에 대한 효과
CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 MCP- 1의 생성에 미치는 영향을 조사하였다. CCE를 24 시간동안 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도로 처리한 결과 100 ㎍/mL, 200 ㎍/mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 나머지 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다( Fig. 7 ).
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Effect of CCE on MCP-1 production of Raw 264.7 cells. Cells were incubated for 24 hrs. Results are represented as mean ± SEM of the three independent experiments.CCE : Water extract of Coptis Rhizome.Normal : Not treated with CCE.* represents P < 0.05 compared to the normal.
Ⅳ. 고 찰
黃連은『本草圖經』 21) 에 “生巫陽川谷及蜀郡泰山, 今 江, 湖, 荊, 夔州郡 亦有, 而以宜城者爲勝, 施, 黔者次之. 苗高一尺已來, 葉似甘菊, 四月開花黃色, 六月結實似芹子, 色亦黃. 二月, 八月采根用.”이라 하였으며『名醫別錄』 22) 에 “主五臟冷熱, 久下泄澼膿血, 止消渴, 大驚, 除水利骨, 調胃厚腸, 益膽, 療口瘡.” 이라하였다. 黃連의 性은 寒하고, 味는 苦하며 2) , 淸熱瀉火, 燥濕, 解毒의 효능이 있어 熱病이 心經에 들어와 생기는 高熱, 煩躁, 譫妄, 또는 熱이 盛하여 迫血妄行으로 인한 吐衄, 心火亢盛으로 인한 心煩失眠, 胃熱로 인한 嘔吐 또는 消穀善飢, 肝火로 인한 目赤腫痛, 그리고 濕熱胸痞, 泄瀉, 痢疾, 熱毒瘡瘍, 疔毒走黃, 牙齦腫痛, 口舌生瘡, 聤耳, 陰腫, 痔血, 濕疹, 湯火傷 등 4) 의 증상을 치료하는데 상용되고 있다.
성분으로 황련( C. japonica Makino)의 뿌리줄기에 는 berberine, coptisine, epiberberine, berberrubine, palmatine, columbamine, jaterrhizine, worenine, magnoflorine, ferulic acid, obakunone, obakulactone 등이 함유되어 있고 2) , 삼각엽황련( C. deltoidea C. Y. Cheng et Hsiao)의 뿌리줄기에는 piberberine, berberine, coptisine, palmatine, worenine, jaterrhizine, magnoflorine 등이 함유되어 있으며 2) , 운련( C. teeta Wallich)의 뿌리줄기에는 epiberberine, berberine, coptisine, palmatine, worenine, jaterrhizine 등이 함유되어 있다 2) . 이밖에 Min 23) 은 benzoic acid methyl ester, oxyberberine, epiberberine 성분을 분리하였다.
황련의 약리작용으로는 항염작용 7) , 항균작용 8) , 항바이러스작용 9) , 항위궤양 10) , 항암작용 11) 등이 보고되었다. 특히 황련 추출물의 항염증 효과에 대한 최근 연구로는 Kim 등 25) 의 췌장세포의 세포사멸억제, Enk 등 24) 의 각질형성세포(Keratinocytes)에서 TNF-α 생성억제 등이 보고되었다.
이러한 과도한 염증성 면역단백질들을 부작용 없이 차단하는 효과적인 항염 약물의 개발이 꾸준히 요구되었고, 특히 황련의 항염 작용에 대한 여러 연구가 보고되는 가운데 7) , 저자는 새로운 항염 약물을 개발하기 위한 기초연구의 일환으로 황련 열수추출물이 마우스 대식세포가 생성한 사이토카인 등에 미치는 영향을 연구하고자 하였다.
본 연구에서는 한국 세포주 은행(KCLB, Korea)으로부터 분양받은 마우스 대식세포인 Raw 264.7 세포에 黃連을 열수추출하여 얻은 시료 CCE를 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도로 처리하고 24 시간 동안 37℃에서 배양한 후, 세포배양 상등액을 채취하여 마우스 대식세포가 생성한 IL-1α, IL-3, IL-9, IL-12p40, IL-13, IL-17, MCP-1의 양을 측정하였다. 본 연구는 CCE가 200 ug/mL의 농도까지 마우스 대식세포에 대하여 세포독성을 나타내지 않음을 확인하고 다음 실험을 진행하였다.
사이토카인은 한 세포에서 생산되어 다른 세포의 형태에 영향을 미치는 단백으로 림프구에서 생산되는 사이토카인을 림포카인(lymphokine) 또는 인터루킨 (interleukin, IL)이라고 하며 사이토카인은 표적세포의 특이 수용체와 결합한다 26) .
IL-1α는 대식세포, 림프구와 같은 염증세포에 대한 강력한 자극인자이며 IL-1α의 mRNA 발현이 방사선 조사후 염증과 섬유화 진행에 따라서 증가한다는 보고가 있다 27) . CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-1α의 생성에 미치는 영향을 조사하였는데 24 시간 처리한 결과 200 ㎍/mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 나머지 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다.
IL-3는 혈구형성과정 중 분화초기에 관여하여 다양한 군체(colony)형성을 자극하며 다기능적 조혈모 세포(pluripotent hematopoietic stem cells)의 분화를 유도하여 대식세포, 과립세포, 거핵세포, 적혈구, 호산구와 비만세포 등의 다양한 형태의 혈구세포를 생성하게 하는 중요한 조혈성 사이토카인이다 28) . CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-3의 생성에 미치는 영향을 조사하였는데 24 시간 처리한 결과 100 ㎍/mL, 200 ㎍/mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 나머지 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다.
IL-9은 일부 T세포 라인 및 골수-유래 비만세포 전구세포의 성장을 도와주는 사이토카인이다 29) . CCE 가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-9의 생성에 미치는 영향을 조사하였는데 24 시간 처리한 결과 25 ㎍/mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 나머지 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다.
IL-12는 IFN-γ의 생성에 중요한 유도인자 중 하나로 활성화된 대식세포와 항원전달세포에서 생성되어 NK세포와 T림프구에 작용하는 것으로 알려졌다 30) . CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-12p40의 생성에 미치는 영향을 조사하였는데 24 시간 처리한 결과 모든 농도에서 유의한 감소가 나타나지 않았다.
IL-13은 P600이라는 이름으로 1989년 생쥐의 Th2 세포주에서 최초로 발견되었으며, 대부분 Th2-타입으로 분화된 CD4+ T세포에서 생산되는 면역 조절성 사이토카인이다 31) . CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-13의 생성에 미치는 영향을 조사하였는데 24 시간 처리한 결과 50 ㎍/mL, 100 ㎍/mL, 200 ㎍ /mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 25 ㎍/mL 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다.
IL-17은 활성화된 CD4+CD45RO+ memory T세포에 의해 주로 발현된다 32) . CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 IL-17의 생성에 미치는 영향을 조사하였는데 24 시간 처리한 결과 25 ㎍/mL, 50 ㎍/mL, 100 ㎍/mL, 200 ㎍/mL의 모든 농도에서 유의한 변화가 나타나지 않았다.
MCP-1은 지질다당체(Lipopolysaccharide; LPS)에 의해 활성화된 대식세포, 단핵구(monocyte), 비만세포(mast cell), 중성구(neutrophil), 성상세포(astrocyte), 섬유아세포(fibroblast) 등의 많은 면역세포에서 분비되는 사이토카인으로 세포성 면역반응이나 세포 성장, 분화 등에 관련되어 있다 33) . CCE가 마우스 대식세포 Raw264.7 cells의 MCP-1의 생성에 미치는 영향을 조사하였는데 24 시간 처리한 결과 100 ㎍/mL, 200 ㎍/mL의 농도에서 유의한 감소가 나타났고, 나머지 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다.
이상의 실험 결과, CCE가 대식세포의 사이토카인 생성증가를 촉발하지 않으며, 이는 곧 대식세포의 사이토카인 생성증가와 관련된 생체 과민반응 및 급만 성 염증질환의 악화를 유발하지 않는다는 것으로 해석될 수 있다. 앞으로 黃連 추출물을 이용한 대식세포와 관련된 염증질환 치료제로의 개발을 위하여 더욱 많은 연구가 필요할 것으로 사료된다.
Ⅴ. 결 론
黃連을 열수추출하여 얻은 시료 CCE를 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도로 마우스 대식세포 Raw 264.7 세포에 24 시간 동안 처리한 후 마우스 대식세포가 생성한 IL-1α, IL-3, IL-9, IL-12p40, IL-13, IL-17, MCP-1의 양을 측정하여 다음과 같은 결과를 얻었다.
1. CCE는 마우스 대식세포의 IL-1α 생성을 200 ㎍ /mL의 농도에서 유의하게 억제시켰으나, 다른 농도 에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다.
2. CCE는 마우스 대식세포의 IL-3, MCP-1 생성을 100, 200 ㎍/mL의 농도에서만 유의하게 억제시켰다.
3. CCE는 마우스 대식세포의 IL-9 생성을 50 ㎍/mL의 농도에서 유의하게 억제시켰으나, 다른 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다.
4. CCE는 마우스 대식세포의 IL-13 생성을 50, 100, 200 ㎍/mL의 농도에서 유의하게 억제시켰으나, 다른 농도에서는 유의한 변화가 나타나지 않았다.
5. CCE는 마우스 대식세포의 IL-12p40, IL-17의 생성에 대하여 25, 50, 100, 200 ㎍/mL의 모든 농도에서 유의한 변화를 일으키지 않았다.
이러한 결과는 CCE가 대식세포의 사이토카인 생성증가를 촉발하지 않으며, 이는 곧 대식세포의 사이토카인 생성증가와 관련된 생체 과민반응 및 급만성 염증질환의 악화를 유발하지 않는다는 것을 의미한다.
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2012 The Korean Pharmacopoeia Tenth Edition Korea Food and Drug Administration Seoul 130 - 2
Kim IR , Kim HC , Kuk YB , Park SJ , Park YK , Park JH , Seo BI , Seo YB , Shin MK , Lee YJ , Lee YC , Lee JH , Leem KH , Cho SI , Chung JK , Joo YS , Choi HY 2004 Boncho-Hak Young-Lim Press Seoul
Wu B 1999 Shennongbencaojing Kexuejishuwenxian publisher Beijing 24 -
1999 Zhonghuabencao Shanghai Scientific and Technical Publishers Shanghai 213 - 23
Kim HC 2001 Hanyakyakri-Hak Jipmoondang Seoul 134 - 7
Kim DH , Kim HM , Ryu JH , Um JY , Kim SC , Yang JH , Cho MK , Lim JP , Hong SH 2006 Hanbangyakri- Hak Sinilbooks Seoul 354 - 7
Otsuka H , Fujimura H , Sawada T , Goto M 1981 Studies on anti-inflammatory agents. II. Anti-inflammatory constituents from Rhizome of Coptis japonica Makino (author's transl) Yakugku Zasshi 101 (10) 883 - 90
Ahn YJ , Park SJ , Lee SG , Shin SC , Choi DH 2000 Cordycepin: selective growth inhibitor derived from liquid culture of Cordyceps militaris against Clostridium spp J Agric Food Chem 48 (7) 2744 - 8    DOI : 10.1021/jf990862n
Song MK , Lee AH , Kim YH , Lee JJ , Sung YC 1995 Inhibition of HIV-1 replication by extract of Coptis chinensis Kor J Appl Pharm 3 (2) 111 - 5
Li B , Shang JC , Zhou QX 2005 Study of total alkaloids from Rhizoma Coptis Chinensis on experimental gastric ulcers Chin J Integr Med 11 (3) 217 - 21    DOI : 10.1007/BF02836508
Kettmann V , Kosfalova D , jantova S , Cernakova M , Drimal J 2004 In vitro cytotoxicity of berberine against HeLa and L1210 cancer cell lines Pharmazine 59 (7) 548 - 51
Ferret PJ , Soum E , Negre O , Fradelizi D 2002 Autoprotective redox bufferingsystems in stimulated macrophages BMC Immunol 3 3 -    DOI : 10.1186/1471-2172-3-3
Stoy N 2001 Macrophage biology and pathobiology in the evolution of immune responses: a functional analysis Pathobiology 69 (4) 179 - 211    DOI : 10.1159/000055944
Morrison DC , Ryan JL 1987 Endotoxins and disease mechanisms Annu Rev Med 38 417 - 32    DOI : 10.1146/annurev.me.38.020187.002221
Tracey KJ , Fong Y , Hesse DG , Manogue KR , Lee AT , Kuo GC , Lowry SF , Cerami A 1987 Anti-cachectin/ TNF monoclonal antibodies prevent septic shock during lethal bacteraemia Nature 330 (6149) 662 - 4    DOI : 10.1038/330662a0
Lee YA , Hong SJ , Lee SH , Park EK , Kim KS , Han CS , Yoo MC , Yang HI 2007 Anti-inflammatory Effects of the Coptis chinensis Extract J Kyung Hee Univ Med Cent 23 (1) 21 - 9
Jung HW , Park YK 2006 Inhibitory effects of Coptidis Rhizoma on the LPS-induced production of nitric oxide and TNF-α in mouse macrophage cells Kor J Herbology 21 (2) 165 - 73
Cho EH , Lee TH 2006 Effects of Coptidis Rhizoma and Aconiti Lateralis Preparata Radix on the Change of Plasma Corticosterone Level and Rectal Temperature Induced by LPS Kor J Herbology 21 (2) 77 - 85
Politch JA , Tucker L , Bowman FP , Anderson DJ 2007 Concentrations and significance of cytokines and other immunologic factors in semen of healthy fertile men Hum Reprod 22 (11) 2928 - 35    DOI : 10.1093/humrep/dem281
Lee KS , Chung JH , Lee KH , Shin MJ , Oh BH , Hong CH 2008 Bioplex analysis of plasma cytokines in Alzheimer's disease and mild cognitive impairment Immunol Lett 121 (2) 105 - 9    DOI : 10.1016/j.imlet.2008.09.004
Hu S 1994 Bencaotujing Anhuikexuejishu publisher Hefei 125 - 6
Tao HJ 1986 Mingyibielu Renminweisheng publisher Beijing 116 -
Min YD 2004 Cytotoxic and MDR reversal active constituents from Coptis japonica, Phellodendron amurense and Sinomenium acutum Sungkyunkwan University
Kim EK , Kwon KB , Han MJ , Song MY , Lee JH , Lv N , Ka SO , Yeom SR , Kwon YD , Ryu DG , Kim KS , Park JW , Park R , Park BH 2007 Coptidis rhizoma extract protects against cytokine- induced death of pancreatic beta-cells through suppression of NK-kappaB activation Exp Mol Med 39 (2) 149 - 59    DOI : 10.1038/emm.2007.17
Enk R , Ehehalt R , Graham JE , Bierhaus A , Remppis A , Greten HJ 2007 Differential effect of Rhizoma coptidis and its main alkaloid compound berberine on TNF-alpha induced NFkappaB translocation in human keratinocytes J Ethnopharmacol 109 (1) 170 - 5    DOI : 10.1016/j.jep.2006.07.013
Parham P 2006 Myeonyeok-Hak Life Science Seoul 454 -
Aggarwal BB , Pocsik E 1992 Cytokines: From clone to clinic Arch Biochem Biophys 292 (2) 335 - 59    DOI : 10.1016/0003-9861(92)90002-E
Koike VC 1997 Stem cell factor and hematopoiesis Blood 90 (4) 1345 - 64
Abbas AK , Lichtman AH 2004 SepobunjaMyeonyeok- Hak Beopmoonsa Seoul 243 - 74, 494-5
Stern AS , Gubler U , Presky DH , Nagram J 1997 Structural and functional aspects of the IL-12 receptor complex In Chemical Immunology 68 23 - 37    DOI : 10.1159/000058692
McKenzin AN , Culpepper JA , de WaalMalefyt R , Briere F , Punnonen J , Aversa G , Sato A , Dang W , Cocks BG , Menon S 1993 Interleukin 13, a T-cellderived cytokine that regulates human monocyte and B-cell function Proc Natl Acad Sci USA 90 (8) 3735 - 9    DOI : 10.1073/pnas.90.8.3735
Yao Z , Fanslow WC , Seldin MF 1995 Herpesvirus Saimiri encodes a new cytokine. IL-17, which binds to a novel cytokine receptor Immunity 3 (6) 811 - 21    DOI : 10.1016/1074-7613(95)90070-5
Conti P , Boucher W , Letourneau R , Feliciani C , Reale M , Barbacane RC , Vlagopoulos P , Bruneau G , Thibault J , Theoharides TC 1995 Monocyte chemotactic protein-1 provokes mast cell aggregation and [3H]5HT release Immunology 86 (3) 434 - 40